81
помітну його особливість. Клінічні мікробіологи намагаються знайти той мінімальний набір
біологічних характеристик, за допомогою якого можна буде гарантовано виявляти й ідентифікувати
патогенні мікроорганізми. Наприклад, деякі збудники виробляють специфічні біохімічні сполуки,
які й потрібно знайти в біологічному зразку. Часто подібну маркерну молекулу можна виявити
безпосередньо, провівши високоспецифічний біохімічний аналіз. Однак це надзвичайно
трудомісткий підхід. Більш придатні універсальні методи, що дають змогу виявити будь-яку
маркерну молекулу (діагностично значущий антиген) незалежно від її хімічної природи. Саме таким
є метод, що ґрунтується на застосуванні високоспецифічних антитіл до збудника або до його
діагностичних антигенів, та ідентифікація комплексів антиген – антитіло в тій чи іншій системі,
наприклад в імуноферментному чи імунофлуоресцентному аналізі.
Одним із підходів, що дає змогу визначити, чи відбулося зв'язування антитіла з антигеном-мішенню,
є серологічні методи. У них використовують або специфічні антигени для виявлення антитіл до
конкретного збудника в сироватці крові, або специфічні антитіла для виявлення власне збудника в
досліджуваному матеріалі.
Зі зростанням кількості робіт із вивчення антигенів різних збудників стало можливим створення
таких штучних антигенів, які б повністю відтворювали структуру природного білка і могли
використовуватись як компоненти діагностичних систем. Відомо, що в імунології штучні антигени
асоціюються з двома категоріями молекул:
1) модифіковані тими чи іншими хімічними групами природні високомолекулярні сполуки
(наприклад, антигени Ландштейнера);
2) істинно штучні антигени — синтезовані людиною комплекси, які повністю відтворюють
структуру природного антигену. Наприклад, після розшифрування групових антигенів еритроцитів
(Льюїс) їх одразу було синтезовано штучно. До таких молекул можна також віднести штучно
синтезований інсулін. Крім того, до них належать молекули, що не є точними аналогами природних
сполук (деякі синтетичні поліпептиди, штучні поліамінокислоти з розгалуженими ланцюгами), їх
будова імітує будову природних антигенів. Найбільший внесок у дослідження цих речовин зробили
Села і Бенацераф.
До синтетичних антигенів належать також молекули, що не мають аналогів у природі, їх
синтезували хіміки. Було встановлено, що такі молекули здатні стимулювати імунну відповідь.
Серед синтетичних молекул проводять пошук імуностимуляторів, аналогів вакцин, носіїв
детермінант різних збудників тощо.
Штучні антигени мали велике значення для розвитку імунології. За допомогою антигенів
Ландштейнера було вивчено молекулярні основи антигенності, визначено роль детермінантних
груп, установлено специфічність активних центрів антитіл (розмір, характер зв'язків антиген –
антитіло). За допомогою синтетичних поліпептидів Села та інших аналогів природних антигенів
вивчено закономірності генетичного контролю антитілогенезу, реакції гіперчутливості
сповільненого типу, відкрито перші гени контролю імунної відповіді. За допомогою антигенів, що
не мають аналогів у природі й побудовані на основі синтетичних поліелектролітів, виявлено
способи фенотипічної корекції імунної відповіді, яка дає можливість перетворити особини з
генетичне низькореагуючих на високореагуючі.
Синтетичні антигени мають не лише наукові, а й практичні переваги. Основними перевагами
застосування синтетичних антигенів є такі:
відпадає потреба у використанні інфекційного матеріалу (це важливо, коли збудник є особливо
небезпечним);
властивості продукту можна схарактеризувати точніше, тому не потрібна або спрощується система
контролю якості, препарати можна стандартизувати;
синтетичні пептидні реагенти зберігають стабільність необмежене тривалий час навіть за кімнатної
температури;
можна отримувати реагенти для діагностики таких інфекційних хвороб, збудники яких не
культивуються в штучних умовах;
вартість виробництва таких препаратів набагато нижча, ніж отримання звичайних антигенів.
На сьогодні штучні антигени знайшли широке затосування як компоненти діагностичних систем для
проведення діагностики на В-клітинному рівні. Визначення антитіл до збудника в сироватці крові
дає таку інформацію:
про епідеміологію інфекції; про стадію і перебіг інфекції у конкретного хворого;
про наявність інфекційних агентів у крові та продуктах крові;
про ступінь ефективності хіміотерапії при бактеріальних та паразитарних хворобах;
про використання їх у програмах вакцинації, особливо проти тих хвороб, за яких серологічна
ідентифікація збудника є найважливішою (наприклад, вірус грипу);
при визначенні етіології хвороб, які чають подібну симптоматику і діагностика яких іншими
методами складна (наприклад, гепатит і діарея);
про стадію хвороби, особливо при вірусних захворюваннях.
На відміну від В-клітинних, Т-клітинні діагностичні системи використовують ще недостатньо,
оскільки тести, що виявляють функції Т-клітин і розпізнавані ними антигени, надзвичайно складні й
не придатні для рутинного використання. Відомо, що Т-клітини розпізнають антиген тільки в
асоціації з МНС, тому для визначення потрібна наявність гістосумісних антигенпрезентувальних
клітин. Для Т-клітин характерна також значна генетична відмінність в імунореактивності. Є кілька
субпопуляцій Т-клітин, що відрізняються одна від одної за імунорегуляторними та ефекторними
функціями, наприклад, опосередковують шкірні реакції ГСТ, лізис АПК тощо. Т-клітини здатні
виконувати як захисні, так і патологічні функції. Потреба в захисних Т-клітинах визначається
природою патогену, його тропізмом та типом інфікованих клітин. Нині Т-тести є предметом
надзвичайно активних наукових досліджень.
ДНК-зонди. Діагностичні засоби на основі аналізу генетичних структур, що визначають
індивідуальність кожного організму, ґрунтуються на принципі комплементарності нуклеотидів
(праймерів), штучно синтезованих людиною. Серед методів визначення специфічного зв'язування
таких зондів з геномом збудника перше місце за чутливістю посідає полімеразна ланцюгова реакція
(ПЛР), яка дає можливість визначити одну молекулу ДНК. ПЛР замінила традиційну гібридизацію,
що в класичному варіанті використовувала як ДНК-зонди фрагменти ДНК з нанесеною
індикаторною частиною. ПЛР — це штучний процес багаторазового копіювання (ампліфікації)
специфічної послідовності ДНК, що здійснюється in vitro. Копіювання ДНК при ПЛР здійснюється
спеціальним ферментом — ДНК-полімеразою, як і в клітинах живих організмів. ДНК-полімераза,
рухаючись по одному ланцюгу ДНК (матриці), синтезує комплементарну їй послідовність ДНК.
Важливо, що ДНК-полімераза не може почати синтез ланцюга ДНК «з нуля», їй потрібен короткий
«затравковий» ланцюг РНК чи ДНК, до якого вона може почати приєднувати нуклеотиди. Основний
принцип ПЛР полягає в тому, що реакція полімеризації (синтезу полімерного ланцюга ДНК з
мономерних нуклеотидних ланок) ініціюється специфічними праймерами (короткими фрагментами
«затравкової» ДНК) у кожному з безлічі повторюваних циклів. Специфічність ПЛР визначається
здатністю праймерів «упізнавати» чітко визначену ділянку ДНК і зв'язуватися з нею відповідно до
принципу молекулярної комплементарності.
Універсальність, висока чутливість і відносна простота виконання зробили метод ПЛР незамінним
для вирішення різних завдань клінічної діагностики, таких як пряме виявлення та ідентифікація
збудників захворювань, молекулярне типування і дослідження властивостей патогенних
мікроорганізмів, аналіз мутацій, пов'язаних з генетичними захворюваннями людини, ідентифікація
особистості людини тощо.
22.2. ОТРИМАННЯ МОНОКЛОНАЛЬНИХ АНТИТІЛ.
Ефективність препаратів антитіл, отриманих при імунізації тварин, змінюється від однієї партії до
іншої, оскільки в одних випадках під час проведення імунізації антитілопродукувальні клітини
сильніше стимулюються одними детермінантами певного антигену, а в інших імунна система
активніше відповідає на інші епітопи того самого антигену. Це може впливати на здатність різних
препаратів антитіл сполучатися з антигенами, оскільки окремі епітопи мають різну ефективність
(стимулювальну здатність). Тому в одній партії поліклональних антитіл може міститися мало
молекул, спрямованих проти основного епітопа, і в результаті вона буде менш ефективною, ніж
інша. Щоб підвищити специфічність антитіл, для діагностики часто використовують моноклональні
антитіла. В-лімфоцити (В-клітини), що синтезують антитіла, не можуть тривалий час
культивуватися в культурі in vitro. Вирішення цієї проблеми дослідники бачили у створенні
гібридної клітини. Отримавши генетичну складову від В-клітини, вона могла б виробляти антитіла,
а отримавши здатність до поділу від клітин сумісного типу, — рости в культурі. Було відомо, що В-
лімфоцити іноді перероджуються і стають раковими (мієломними) клітинами, набуваючи здатності
до росту в культурі і зберігаючи разом з тим багато властивостей В-клітин. Так клітини мієломи,
насамперед ті, що не виробляють антитіл, стали кандидатами на злиття з антитілопродукувальними
В-клітинами.
Перший крок у процесі отримання гібридної клітинної лінії, що продукує антитіла однієї
специфічності, полягає у введенні мишам антигену – імунізації. Після циклу імунізації, проведеного
впродовж кількох тижнів, перевіряють, чи відбувся розвиток у тварин імунної відповіді. Якщо
відповідь розвинулася, то у тварин беруть селезінку, промивають її, подрібнюють і злегка
струшують для вивільнення одиничних клітин, серед яких знаходяться й антитілопродукувальні В-
клітини. Клітини селезінки змішують із суспензією спеціальних мієломних клітин, дефектних
(мутантних) за ферментом гіпоксантин-гуанін-фосфорибозилтрансферазою (ГГФРТ). Таку
суспензію впродовж кількох хвилин інкубують у 35 %-му розчині поліетиленгліколю, а потім
переносять у середовище, що містить гіпоксантин, аміноптерин і тимідин (середовище ГАТ).
Оброблення поліетиленгліколем сприяє злиттю клітин, проте воно відбувається рідко і є
здебільшого випадковою подією. У суміші містяться клітини мієломи, селезінки, а також гібридні
(ті, що злилися) клітини мієломи-селезінки. Однак у середовищі ГАТ ростуть тільки гібридні
клітини мієломи-селезінки, всі інші типи клітин гинуть. Клітини селезінки, що злилися, взагалі не
ростуть у культурі in vitro, а дефектні (мутантні) мієломні клітини ГГФРТ не можуть
використовувати гіпоксантин як попередник у процесі біосинтезу пуринових основ гуаніну й
аденіну, без яких неможливий синтез нуклеїнових кислот. Однак у них є інший природний шлях
синтезу пуринів — за участю дигідрофолатредуктази, тому до складу середовища і входить
аміноптерин, що інгібує активність цього ферменту. Отже, мієломні клітини ГГФРТ не можуть
синтезувати пурини в середовищі ГАТ і гинуть.
Клітини селезінки-мієломи, що злилися, ростуть у середовищі ГАТ, оскільки клітини селезінки
постачають функціональний фермент ГГФРТ, що надає гібридомі здатності утилізувати екзогенний
гіпоксантин середовища, незважаючи на блокування синтезу пуринів за участю
дигідрофолатредуктази аміноптерином, та за рахунок здатності клітин мієломи до активного поділу.
Тимідин потрібен для усунення блокування в синтезі піримідинів, зумовленого інгібуванням
дигідрофолатредуктази. На 10 —14-ту добу після злиття клітин у середовищі ГАТ залишаються і
ростуть тільки злиті гібридоми селезінки-мієломи. Їх потім вносять у заглиблення пластикових
мікротитрувальних планшетів і вирощують на повному культуральному середовищі без ГАТ.
Після проведення злиття й отримання гібридоми потрібно здійснити ідентифікацію (скринінг)
гібридних клітинних ліній, що секретують специфічні антитіла до антигену, який використали для
імунізації. Для цього зазвичай проводять скринінг культуральних середовищ, що містять антитіла,
які секретуються, наприклад, імуноферментним аналізом. Щоб отримати лінії, які походять від
однієї клітини (клони), клітинну суспензію з таких заглиблень розбавляють культуральним
середовищем і висівають в інші заглиблення. Після культивування отриманих клонів середовища
знову тестують, визначаючи, яка з клітинних ліній (гібридом) продукує моноклональні антитіла
(МкАТ), що розпізнають антиген-мішень. У тому разі, коли отримують більш як одну специфічну
гібридому, проводять подальші дослідження, що дають змогу визначити, чи спрямовані антитіла,
які виробляються різними клонами, проти однієї й тієї самої антигенної детермінанти. Кожний клон,
що продукує моноклональні антитіла, можна підтримувати в культурі практично нескінченно. Крім
того, зразки можна заморозити в рідкому азоті й використовувати їх надалі як джерело клітин.
Іноді використовують культивування гібридом в організмі мишей. Для цього гібридому вводять у
черевну порожнину мишей сумісної генетичної лінії після попереднього пригнічення їхньої імунної
системи, наприклад, введенням мінерального масла. Гібридома (власне злоякісна пухлина)
приживається у черевній порожнині миші, починає розмножуватися і синтезувати значну кількість
антитіл, які можна виділити із асцитної рідини.
Химерні молекули (гуманізовані ан|титіла). Отримані за гібридомною технологією МкАТ мають
абсолютно однакову специфічність, належать до одного класу, підкласу імуноґлобулінів і є
практично стандартними препаратами, характеристики яких не залежать від умов утримання
тварин, індивідуальних особливостей тощо. У зв'язку з цим нині МкАТ знайшли широке
застосування для виділення високоочищених препаратів деяких речовин, як компоненти
діагностичних препаратів, нові типи вакцин, імунотерапевтичні засоби.
Так, багато МкАТ були тестовані на здатність пригнічувати відторгнення пересаджених тканин та
впливати на перебіг аутоімунних хвороб. Однак виникла проблема отримання МкАТ, придатних для
терапії людей. Оскільки за своєю природою МкАТ є переважно мишачими, це значно обмежує їх
використання як терапевтичних препаратів через їх імуногенність для людини. При введенні
мишачих МкАТ в організмі людини утворюються антитіла проти них. Це не лише призводить до
блокування дії антитіл миші, а й може зумовити появу алергічної реакції і навіть анафілактичного
шоку.
Уникнути цих проблем вдалося лише з використанням сучасних методів генної інженерії. За
допомогою маніпуляцій з генами було отримано химерні молекули імуноґлобулінів – гуманізовані
антитіла. При створенні таких антитіл враховують імуногенність окремих ділянок молекули
імуноглобуліну та їх роль у здійсненні ефекторних функцій. Насамперед було замінено Fc-фрагмент
мишачих МкАТ відповідною ділянкою антитіла людини. Це пов'язано з тим, що Fc-фрагмент
мишачих МкАТ при введенні їх в організм людини виконує роль ефектора імунної відповіді
недостатньою мірою і саме він в основному відповідає за індукування синтезу антитіл проти
мишачих антитіл.
Для зменшення імуногенності методами генної інженерії провели також заміну послідовностей
ДНК, що кодують Fv-ділянки L- і Н-ланцюгів імуноглобуліну людини на аналогічні ділянки
мишачих специфічних МкАТ. Такі химерні молекули були протестовані як імунотерапевтичні
препарати, наприклад, при лікуванні раку товстої кишки. Ще більш перспективним напрямом
отримання гуманізованих антитіл є створення таких людських антитіл, у яких лише гіперваріабельні
(CDR) ділянки замінено відповідними фрагментами МкАТ мишей та щурів. Такі антитіла можуть
бути перспективними імунотерапевтичними засобами, оскільки можуть мати будь-яку
специфічність при збереженні практично повністю людського походження. З використанням
сучасних методів спрямованого мутагенезу можна замінити й деякі амінокислоти з каркасних
ділянок, що певною мірою беруть участь у формуванні активного центру поряд з
гіперваріабельними ділянками.
На сьогодні відомо понад 50 різних МкАТ, подібних до антитіл людини. Така досить невелика їх
кількість пов'язана з тим, що описані технології — ефективні й універсальні, проте є надзвичайно
затратними як за часом, так і за вартістю. Тому все актуальнішими стають нові технології
отримання функціональних антитіл у культурі рекомбінантних клітин Е. соlі.
22.3. БІОТЕХНОЛОГІЧНІ ПРОДУКТИ, ЯКІ ВИКОРИСТОВУЮТЬ ДЛЯ ВПЛИВУ НА
ІМУННУ СИСТЕМУ.
22.3.1. Інтерферони
Родину білків, ідентифікованих у риб, птахів, рептилій і ссавців як антивірусних аґентів широкого
спектра дії, називають інтерферонами. Ці білки було виявлено під час вивчення вірусної
інтерференції (тварина, інфікована одним вірусом, є стійкою до інфікування іншим неспорідненим
вірусом). Інтерферони впливають на ріст клітин і функції імунної системи. Така дія інтерферонів на
клітини зумовлена змінами в метаболізмі, що виникають після зв'язування інтерферону зі
специфічним рецептором. Інтерферони досліджували переважно як антивірусні агенти. Вони
сприяють лікуванню застудних захворювань, гепатитів, оперізувального лишаю тощо. Вважають,
що при вірусній інфекції клітини синтезують інтерферон і секретують його в міжклітинний простір,
де молекули інтерферону зв'язуються з рецепторами сусідніх неінфікованих клітин. У клітині під
дією інтерферону дерепресуються мінімум два гени і починається синтез двох ферментів —
протеїнкінази, що фосфорилює рибосомальний білок, та факторів ініціювання, потрібних для
трансляції. Таким чином, трансляція мРНК пригнічується. Другий фермент каталізує утворення
короткого полімеру аденілової кислоти, яка активує латентну ендонуклеазу, що призводить до
деградації мРНК як вірусу, так і клітини-хазяїна. В будь-якому випадку кінцевим результатом дії
інтерферону є утворення бар'єра з неінфікованих клітин навколо осередку вірусної інфекції.
Про ефективність дії інтерферону in vivo свідчать досліди з уведення інфікованим мишам
антисироватки до власних інтерферонів. При цьому летальна доза вірусу була в кількасот разів
меншою, ніж у контрольній групі. Було показано, що інтерферони важливі не тільки для лікування,
а й для профілактики цілої низки захворювань.
Інтерферони як система білків мають значно ширшу біологічну дію. Ферменти, синтез яких
індукують інтерферони, здатні пригнічувати поділ клітин хазяїна, модулювати активність інших
клітин (наприклад, НК), тобто розглядаються як перспективні протипухлинні препарати.
Інтерферони утворюються не лише в організмі людини, а й у інших хребетних. Доведено, що
інтерферони є чітко видоспецифічними білками. Тому інтерферони тваринного походження не
вдається успішне застосовувати для лікування людини.
Інтерферони продукуються, як правило, у відповідь на дію різних стимуляторів. Ці стимулятори
називають індукторами інтерфероногенезу. Ними можуть бути віруси, хімічні речовини, а також
імунологічні взаємодії.
За антигенними властивостями інтерферони поділяють на альфа (лейкоцитарний); бета
(фібробластний); гамма (імунний).
У людини формується значна кількість підтипів альфа-інтерферону (нині відомо 23), і вони є
найсильнішими антивірусними агентами, тоді як ідентифіковано один основний тип людського
бета-інтерферону, який є сильним противірусним агентом. Людський гамма-інтерферон має
незначну подібність до альфа- і бета-інтерферонів. Він є модулятором імунної відповіді. Природні
молекули бета- і гамма-інтерферонів глікозильовані.
Отримання альфа-інтерферону. Перші спроби отримання інтерферонів було здійснено в середині
50-х років минулого століття. Першим способом отримання альфа-інтерферону було добування
його з клітин периферичної крові людини, активованих вірусом Сендай. Проте цей спосіб
характеризувався надзвичайно низьким виходом. За його допомогою отримували невеликі кількості
інтерферону, не придатні для широкомасштабного клінічного використання.
Нині застосовують два способи: генно-інженерний, за якого альфа-інтерферон експресується
культурою клітин Е.соlі, трансформованої вектором, в який вбудовано послідовність ДНК, що кодує
зрілий білок, та отримання інтерферонів у культурі лімфобластоїдних клітин. За цим способом
грубий матеріал з культури лімфобластоїдних клітин, попередньо активованих вірусом Сендай,
очищали на імунохроматографічних колонках (імуно-афінна хроматографія із моноклональними
антитілами, специфічними до альфа-інтерферону). У зв'язку з використанням для вироблення
інтерферону лімфобластоїдних клітин виникло кілька запитань з прриводу можливості
використання трансформованих клітин у біотехнологічних процесах виробництва медичних
препаратів. Деякі лінії, особливо отримані з клітин лімфоми Беркіта, є злоякісними. Використання
трансформованих клітинних ліній, особливо пухлинного походження, для виробництва медичних
препаратів було вперше застосовано саме для отримання альфа-інтерферону. На сьогодні
загальновизнаним є те, що перещеплювані лінії можна використовувати для виробництва
фармацевтичних препаратів у разі достатнього очищення кінцевого продукту та виконання певних
вимог.
Особливу увагу під час отримання інтерферонів з культур лімфобластоїдних клітин звертають на
можливу наявність у готовому продукті таких домішок:
1) біологічно активних сторонніх агентів (ДНК, білки, сторонні інфекційні агенти, ендогенні
ретровіруси). Ці агенти можуть міститися в неочищеному препараті, але не в готовому продукті;
2) матеріалів з культурального середовища, речовин, які використовують для посилення
продукування інтерферону, індукторів інтерфероногенезу, а також речовин, що використовувались
для очищення препарату.
Відразу після отримання перших партій синтетичного альфа-інтерферону його почали досліджувати
на можливість використання для лікування онкологічних захворювань.
Бета-інтерферон (фібробластний) синтезується фібробластами. Фібробласти легко підтримувати в
культурі, однак вони ростуть лише у вигляді моношару. Для збільшення площі поверхні у
ферментери вносять спеціальні гранули субстрату. Фібробластний інтерферон також досліджували
на можливість використання для лікування множинної мієломи, раку молочної залози.
Гамма-інтерферон (імунний) отримують при культивуванні Т-лімфоцитів людини за наявності
мітогенів. Ця технологія також є традиційною, її характеризують низький вихід, висока вартість
очищення та низька чистота отриманих препаратів. Усі надії на масштабне виробництво
інтерферонів покладають на технології рекомбінантних ДНК.
Біосинтез інтерферонів у клітинах генетично модифікованих організмів. Клонувати гени
інтерферону було значно складніше, ніж у перших успішних експериментах, проведених за
допомогою генної інженерії. Для перших рекомбінантних молекул (інсулін, гормон росту) була
відома послідовність амінокислот. Для інтерферону таких відомостей не було. Тому було зроблено
спроби пошуку можливих способів отримання інтерферону на основі його противірусної
активності.
У 1989 р. Гілберт і Вайсман з Бостона повідомили, що їм вдалося отримати інтерферон людини в
генетично модифікованих мікроорганізмах. Цей дослід ґрунтувався на спостереженні, що при
ін'єкції мРНК з інтерферонпродукувальних лімфоцитів у гігантські ооцити Xenopus в останніх
синтезується інтерферон. Було визначено розмір матричної РНК альфа-інтерферону. Для цього полі-
А-вмісну РНК з інтерферонпродукувальних клітин фракціонували, окремі фракції вводили в ооцити
і визначали противірусну активність білкових продуктів. Активність було зафіксовано при ін'єкції в
ооцити 12S РНК, і саме цю фракцію було використано для конструювання бібліотеки кДНК в
плазміді pBR322. Було перевірено близько 20 000 клонів Е. соlі, отриманих при трансформації
плазмідами бібліотеки. Послідовності було ідентифіковано гібридизацією індивідуальних клонів
кДНК з альфа-інтерфероновою мРНК шляхом соузерн-блотингу. Спочатку виділяли великі групи, з
яких потім відбирали менші підгрупи в межах цього клону. Для доведення того, що кДНК кодує
саме інтерферон, її вбудовували в бактерію і реєстрували противірусний ефект продукту. Одразу
після отримання рекомбінантного альфа-інтерферону тими самими методами було клоновано кДНК
бета- і гамма-інтерферонів.
Було показано, що гени альфа- і бета-інтерферонів близькі за нуклеотидним складом. Гени альфа-
інтерферону належать до великої генної родини, яка кодує різні субтипи альфа-інтерферону, а
також його неактивні форми. Для бета-інтерферону було клоновано лише один ген. Усі гени й
псевдогени альфа-інтерферону, а також єдиний ген бета-інтерферону локалізовані в 9-й хромосомі.
Деякі з них тісно зчеплені між собою. Жоден з генів альфа-інтерферону і ген бета-інтерферону не
містять інтронів. Бета- і деякі альфа-інтерферони глікозильовані.
У перших успішних генно-інженерних експериментах синтез був малоактивним. Підвищити
активність можна було завдяки використанню інших векторів або потужніших промоторів. Це
вдалося здійснити, використовуючи конструкції, що включали промотор лак-оперону.
Продукування підвищилося в десятки разів, що дало змогу отримувати 1 мг інтерферону з 1 л
культури. Одразу після вдалих експериментів з Е. соlі було використано еукаріотичні моделі —
дріжджі Saccharomyces. Саме на прикладі альфа-інтерферону було показано можливість експресії
генів людини в клітинах дріжджів. При трансформації Saccharomyces використали конструкцію,
здатну ефективно реплікуватися як у клітинах дріжджів, так і в бактеріальних клітинах — так звані
човникові вектори. В цьому досліді ген альфа-інтерферону об'єднували з геном
алкогольдегідрогенази дріжджів, що має потужний промотор. Для дріжджової системи характерний
дуже високий вихід. Крім того, глікозилювання та дозрівання молекул білків у дріжджів
відбувається за тими самими принципами, що й в інших еукаріотів, що особливо важливо для
отримання білків людини.
Клонування генів гамма-інтерферону. Клонування генів гамма-інтерферону виявилося
найскладнішим. По-перше, важко було індукувати продукування гамма-інтерферону. Препарати
мРНК із селезінки людини, в яких за допомогою бактеріального токсину було індуковано
продукування гамма-інтерферону, розділяли за розмірами і вводили різні фракції в ооцити Xenopus.
Було отримано 18S мРНК, продукт трансляції якої мав антивірусну активність. На її основі було
створено кДНК, яку ввели Е. соlі в складі космідного вектора. Рекомбінанти розмножували в
клітинах Е. соlі і досягали експресії. Клони використовували для селекції відповідного
хромосомного гена в бібліотеці кДНК людини у векторах на основі фага лямбда. Таким чином було
ідентифіковано і секвеновано ген гамма-інтерферону. Він містить 3 інтрони і 4 екзони, є унікальним
і міститься в єдиній копії в 12-й хромосомі. Відсутність інтронів у генах альфа- і бета-інтерферонів
має велике значення, оскільки вони синтезуються в інфікованій вірусом клітині, їх синтез не
залежить від сплайсингу, який в інфікованій клітині може бути порушений.