Климнюк С.І., Ситник І.О., Творко М.С., Широбоков В.П. Практична мікробіологія: Посібник

Подождите немного. Документ загружается.

211

Розділ 11. Мікробіологічна діагностика окремих інфекційних захворювань

куваті із зазубреними краями, інші – круглі, опуклі, з вологим блиском. 3-4 колонії

мікроскопують, досліджують на рухливість і пересівають на середовище Ольке-

ницького для виділення чистої культури. Якщо на агарі Плоскирєва росту немає,

або відсутні характерні колонії шигел, роблять висів із селенітового бульйону на

агар Плоскирєва або Ендо. При достатній кількості типових колоній ставлять орі-

єнтовну реакцію аглютинації на склі з сумішшю сироваток Флекснера і Зонне.

На третій день враховують характер росту на середовищі Олькеницького.

Шигели викликають характерні зміни трицукрового агару (жовтіє стовпчик, колір

скошеної частинки не змінюється, почорніння відсутнє). Підозрілу культуру сіють

в середовища Гісса для визначення біохімічних властивостей (табл. 41), або вико-

ристовують ентеротести.

Таблиця 41

Біохімічні властивості шигел

Ферментація вуглеводів

Вид

лактоза глюкоза мальтоза маніт

ульцит сахароза

Індол Каталаза

S. dysenteriaе

S. flexneri

S. boydii

S. sonnei

повільно

Примітка: “+” – ферментація вуглеводів, утворення індолу, каталази; “–” – відсутність ознак

Серологічна ідентифікація виділених культур проводиться за допомогою ре-

акції аглютинації на склі спочатку з сумішшю сироваток проти видів Флекснера і

Зонне, які найчастіше зустрічаються, а потім із моновидовими та монорецептор-

ними сироватками. Останнім часом випускають комерційні як полівалентні, так і

моновалентні сироватки проти всіх видів збудників дизентерії.

Для визначення виду шигел використовують також реакцію коаглютинації.

Вид збудника встановлюють за допомогою позитивної реакції з білком А золоти-

стого стафілокока, на якому адсорбовані специфічні антитіла проти шигел. На

типову колонію наносять краплю сенсибілізованого антитілами протеїну А, похи-

тують чашку й через 15 хв під мікроскопом спостерігають появу аглютинату. Ре-

акцію коаглютинації можна ставити вже на другий день дослідження, якщо на

середовищі є достатня кількість лактозонегативних колоній.

З метою швидкої і надійної ідентифікації шигел ставлять також пряму й не-

пряму реакції імунофлуоресценції та ензиммічених антитіл. Остання при дизен-

терії є високоспецифічною і все частіше використовується при лабораторній діаг-

ностиці захворювання.

Для виявлення антигенів у крові хворих, у тому числі в складі циркулюючих

імунних комплексів, можна використати реакцію агрегат-гемаглютинації та ме-

тод ІФА (діагностична тест-система “Шигелапласт”). Антигени шигел у випорож-

неннях і сечі виявляють за допомогою РНГА, РЗК і коаглютинації. Ці методи ви-

сокоефективні, специфічні й придатні для ранньої діагностики.

212

Частина ІІІ. Спеціальна мікробіологія

Щоб встановити належність виділених культур до роду шигел ставлять та-

кож кератокон’юнктивальну пробу на гвінейських свинках. У кон’юнктивальний

мішок вносять петлю агарової культури або краплю бульйонної. Важливо не трав-

мувати при цьому рогівку. Свіжовиділені шигели викликають виражений кератит

на 2-5 добу після введення культури. Сальмонели також можуть викликати кон’юнк-

тивіт, але вони не уражають рогівку. Однак, слід пам’ятати, що ентероінвазивні

кишкові палички (ЕІКП) особливо серовари 028, 029, 0124, 0143 та ін. також вик-

ликають експериментальний кератокон’юнктивіт у гвінейських свинок.

Бактеріологічний метод діагностики дизентерії є найдостовірнішим, але в

різних лабораторіях (залежно від кваліфікації бактеріологів і лаборантів) він дає

лише 50-70 % позитивних результатів. Окрім діагностики захворювань, бакте-

ріологічне дослідження проводять також для виявлення бактеріоносіїв, особливо

серед працівників продовольчих підприємств, дитячих установ і лікарняних за-

кладів. З метою встановлення джерел інфекції визначають фаговари й коліцино-

вари шигел.

Серологічну діагностику дизентерії проводять рідко. Інфекційний процес

не супроводжується значним антигенним подразненням, тому титри антитіл у си-

роватці хворих і реконвалесцентів невисокі. Їх виявляють на 5-8 добу захворю-

вання. Найбільше антитіл утворюється на 2-3-му тижні.

Об’ємну реакцію аглютинації з мікробними діагностикумами ставлять так

само, як і реакцію Відаля при черевному тифі і паратифах. Сироватку крові розво-

дять від 1:50 до 1:800. Діагностичним титром антитіл до S.flexneri у дорослих

хворих вважають 1:200, до S.dysenteriaе і S.sonnei – 1:100 (у дітей відповідно –

1:100 і 1:50).

Більш достовірні результати отримують при постановці РНГА особливо при

використанні методу парних сироваток. Діагностичне значення має збільшення

титру в 4 і більше разів. Еритроцитарні діагностикуми виготовляють, в основно-

му, з антигенів S.flexneri та S.sonnei.

Допоміжне значення для діагностики має також постановка алергічної внут-

рішньошкірної проби з дизентерином Цуверкалова (розчин білкових фракцій шигел

Флекснера і Зонне). Вона стає позитивною у хворих на дизентерію, починаючи з

4-го дня. Облік реакції проводять через 24 год. При появі гіперемії і набряку шкіри

діаметром 35 мм і більше реакція оцінюється як сильно позитивна, при 20-34 мм –

помірна і при 10-15 мм – сумнівна.

Клебсієльози

Клебсієльози – захворювання, які викликають бактерії роду Klebsiella. Вони

можуть бути гострими і хронічними; гострі викликають Klebsiella pneumoniae,

K.oxytoca, K.planticola, K.terrigena, хронічні – K.ozaenae i K.rhinoscleromatis. Най-

частіше запальні і септичні процеси викликає K.рneumoniae – пневмонії, бронхі-

ти, септицемії, отити, перитоніти, інфекції жовчних і сечовивідних шляхів, хар-

чові токсикоінфекції, госпітальні ранові та опікові інфекції тощо. Значно рідше

213

Розділ 11. Мікробіологічна діагностика окремих інфекційних захворювань

зустрічаються такі хронічні хвороби, як смердючий нежить (озена) і риносклеро-

ма. Останнім часом резистентні до антибіотиків штами клебсієл можуть стати

збудниками внутрішньолікарняних інфекцій.

Основним методом лабораторної діагностики клебсієльозів є бактеріологіч-

не дослідження. Серологічний метод застосовують рідко. Проводять також мікро-

скопію мазків.

Матеріалом для мікробіологічного аналізу може бути харкотиння, слиз із рото-

і носоглотки, промивні води і блювотні маси, гній, кров, ліквор, сеча, жовч, випо-

рожнення, секційний матеріал, інфільтрати слизової при риносклеромі, кірочки

при озені, змиви з предметів тощо.

Бактеріоскопія. У мазках, забарвлених за Грамом, капсульні форми клебсієл

мають вигляд грамнегативних, еліпсоподібних, товстих паличок довжиною 5-8 мкм

і шириною 3-5 мкм (рис. 65). Безкапсульні форми мають менші розміри (0,3-0,6 ×

1-3 мкм), поодиноке, парне або ланцюжкове розташування. У гістологічних зрізах

із склеромних гранулем видно багато гігантських клітин Мікуліча, наповнених

желатиноподібною масою, в якій знаходяться клебсієли, оточені капсулою.

Бактеріологічне дослідження проводять за такою ж схемою, що й при по-

дібних захворюваннях, викликаних іншими видами ентеробактерій. Посів матері-

алу роблять на селективне середовище К-2 (МПА з сечовиною, рафінозою, бром-

тімоловим синім). Через добу на ньому виростають крупні, опуклі, блискучі, сли-

зуваті колонії жовтого, зеленувато-жовтого або голубого кольору. На середовищах

Ендо і Плоскирєва більшість клебсієл утворюють колонії з металевим блиском,

характерні для лактозопозитивних бактерій.

На простому або гліцериновому агарі через 2-4 год вирощування основні види

клебсієл утворюють характерні колонії з різною внутрішньою структурою, що

виявляють при агар-мікроскопії таких молодих колоній. У К. pneumoniаe вони

мають петлеподібну будову, у K. rhinoskleromatis – концентричну, а у K. ozenae –

розсіяно концентричну. Це дає змогу диференціювати названі види клебсієл між

собою.

Зрілі колонії мікроскопують і відсівають на косий агар для виділення чистих

культур. Ідентифікацію останніх проводять по-

сівом в середовища строкатого ряду Гісса, жовч-

ний бульйон, визначають рухливість, наявність

уреази. Клебсієли нерухомі, більшість штамів роз-

кладають глюкозу, лактозу, сахарозу, сечовину, да-

ють позитивну реакцію Фогеса – Проскауера, не

виділяють сірководень (табл. 42).

І все ж основною й надійнішою є серологічна

ідентифікація клебсієл. Для її проведення викори-

стовують дві реакції: капсульну аглютинацію на

склі з живою культурою і О-аглютинацію. При

постановці першої з них на предметне скло нано-

сять діагностичні протиклебсієльозні капсульні

Рис. 65. Клебсієли:

мазок із чистої культури.

214

Частина ІІІ. Спеціальна мікробіологія

сироватки, а також краплю 0,9 % розчину хлориду натрію (контроль). Біля кра-

пель сироваток та ізотонічного розчину розтирають повну петлю досліджуваної

культури, змішують їх, добиваючись ретельної гомогенізації. При позитивному

результаті утворюється аглютинат у вигляді грубих ниток або тяжів. У контрольній

краплі аглютинації не повинно бути.

Для О-аглютинації виділені культури стерилізують в автоклаві протягом 150 хв

при 2-ох атм. При цьому руйнується капсула, культура не взаємодіє з К-сироватка-

ми і аглютинується О-сироватками. Простерилізовану культуру потрібно двічі

відмити у фізіологічному розчині шляхом центрифугування і з осадом поставити

реакцію аглютинації на склі.

Із додаткових методів ідентифікації клебсієл використовують фаготипуван-

ня. Фаги капсульних бактерій мають чітку видову специфічність. Техніка прове-

дення реакції аглютинації та фаготипування детально викладена в інструкціях до

відповідних препаратів.

Визначають також чутливість виділених культур до антибіотиків за допомо-

гою дискодифузійного методу.

Серологічні дослідження проводять шляхом постановки розгорнутої реакції

аглютинації з сироваткою крові хворих і капсульним та безкапсульним антигена-

ми, а також зв’язування комплементу (титр 1:40 і вище) та більш чутливої і спе-

цифічної реакції непрямої гемаглютинації з еритроцитарним клебсієльозним діаг-

ностикумом. Для постановки останньої сироватку хворих розводять у лунках полі-

стиролових планшет від 1:20 до 1:320 в об’ємі 0,25 мл і добавляють такий же

об’єм 1% зависі сенсибілізованих еритроцитів. Облік результатів проводять через

2 год експозиції планшет при 37 °С. Діагностичний титр 1:160 і вище. Надійніше

результати отримують при постановці реакції в динаміці, коли виявляють 4-крат-

не наростання титру антитіл.

Холера

Холера – гостра, карантинна, особливо небезпечна інфекційна хвороба з

фекально – оральним механізмом передачі, характеризується рясним поносом,

Ферментація

Вид

Глю-

коза

Лак-

тоза

Саха-

роза

Сечо-

вина

Індол

Реакція

Фогеса-

Проскауера

Утилі-

зація

цитрату

K.pneumoniae + + + + - + +

K.oxytoca + + + + + + +

K.planticola

+ + + +

+ +

K.terrigena

+ + + -

- +

K.ozaenae

+ -

- -

K.rhinoskleromatis

- - -

Таблиця 42

Диференціальні ознаки клебсієл

215

Розділ 11. Мікробіологічна діагностика окремих інфекційних захворювань

блюванням, сильною інтоксикацією та зневодненням організму. Збудниками за-

хворювання є два біовари холерного вібріона Vibrio cholerae і Vibrio eltor. Обидва

відносяться до роду Vibrio родини Vibrionaceae. Окрім цих збудників, до роду Vibrio

відносяться також умовно – патогенні вібріони: V.metschnikovii, V.parahaemolyticus,

V.alginolyticus, V.vulnificus, V.fluvialis. За певних умов вони можуть викликати у

людини гастроентерити.

Узяття і доставка матеріалів. Для мікробіологічного дослідження сте-

рильною ложкою беруть випорожнення, блювотні маси, промивні води хворого в

об’ємі 10-20 мл, переносять їх роздільно у стерильні скляні банки, закривають

скляними чи гумовими пробками і заливають парафіном. Найкращі результати

дає дослідження проб, взятих до початку антимікробної терапії.

Другу порцію випорожнень і блювотних мас в об’ємі 1-2 мл засівають біля

ліжка хворого у 10-50 мл транспортного середовища (1 % пептонна вода рН 7,8 чи

рН 9,3). Якщо випорожнень в момент забору матеріалу немає, вирізають забруд-

нені фекаліями ділянки білизни. Досліджують також жовч, узяту за допомогою

дуоденального зондування.

Під час епідемічного спалаху холери широко практикують ректальний забір.

Для цього стерильний ватний тампон або алюмінієву петлю вводять у пряму киш-

ку на глибину 5-19 см, забирають вміст і вносять у флакон або пробірку з 1%

лужною пептонною водою.

Від трупа беруть невеликі ділянки тонкої кишки з верхнього і нижнього від-

ділу, які перев’язують з обох кінців лігатурами. Забирають також відрізок прямої

кишки довжиною 10-15 см. Жовчний міхур вирізають з частиною паренхіми печінки.

При бактеріологічному обстеженні людей, що були в контакті з хворими або

вібріоносіями, а також реконвалесцентів перед виписуванням із стаціонару доціль-

но заздалегідь дати їм проносне, яке одночасно діяло б і як жовчогінне (напр. 25-

30 г сульфату магнію). Для дослідження відбирають рідку частину випорожнень,

що надійшли з верхнього відділу тонкої кишки і мають вміст жовчного міхура.

За епідеміологічними показниками досліджують воду відкритих водоймищ,

водопровідну воду, стічні води, мул, гідробіонтів (риб, жаб, устриць, молюсків,

рачків тощо), харчові продукти. Змиви з об’єктів навколишнього середовища відби-

рають з площі 0,25 м

ватними тампонами, змоченими 1% лужною пептонною

водою, і в ній транспортують до лабораторії.

На кожну банку, флакон, пробірку наклеюють направлення, в якому вказу-

ють прізвище, ініціали, вік хворого, його домашню і службову адресу, попередній

діагноз, дату і час взяття проб, підпис лікаря, що направив матеріали. Відібрані

проби потрібно доставити до лабораторії протягом 3-х годин. Якщо це неможли-

во, матеріал сіють в 1 % пептонну воду з телуритом калію (1:100000) і на чашки з

лужним м’ясо-пептонним агаром. При великій віддалі до лабораторії всі проби

вміщують у металеві пенали або банки, обмостивши ватою чи стружками. Потім

їх пакують у дерев’яний ящик, пломбують, надписують “верх, обережно!” і з ве-

ликими пересторогами спеціальним транспортом із посланцем доставляють до

лабораторії.

216

Частина ІІІ. Спеціальна мікробіологія

Холера – особливо небезпечне захворювання. Тому бактеріологічне дослід-

ження потрібно проводити в режимних лабораторіях, в яких працює спеціально

підготовлений персонал. Якщо поблизу такої лабораторії немає, досліджуваний

матеріал направляють до найближчої звичайної бактеріологічної лабораторії. То ді

прийом інших аналізів припиняють, встановлюють суворий протиепідемічний ре-

жим, персоналу забороняють працювати натщесерце. Лабораторія повинна пра-

цювати цілодобово.

Бактеріологічне дослідження. Лабораторна діагностика холери має винят-

ково велике значення, оскільки виділення збудника дає право встановити остаточ-

ний діагноз і розгорнути профілактичні заходи для припинення епідемічного роз-

повсюдження захворювання. Окрім того, вона дозволяє виявити вібріоносіїв, оці-

нити контроль за об’єктами оточуючого середовища і ефективність дезінфекції.

Бактеріологічну діагностику проводять поетапно.

Перший етап. Із досліджуваних матеріалів виготовляють мазки, фіксують

спиртом або сумішшю Никифорова, забарвлюють за Грамом і мікроскопують під

імерсійним об’єктивом. Холерні вібріони виглядають трохи зігнутими паличками

червоного кольору, розташованими між тяжами слизу у вигляді своєрідних скуп-

чень, що нагадують “табунці рибок” (рис. 66).

Поряд з типовими вібріонами в мазках часом виявляють кулясті, колбоподібні,

спіралеподібні клітини. Це зменшує діагностичну цінність бактеріоскопічного

методу. На цьому етапі з метою прискорення дослідження доцільно використову-

вати реакцію імунофлуоресценції з міченими діагностичними ОІ холерними си-

роватками та РНГА з антитільним еритроцитарним діагностикумом. Використо-

вують і імунотушовий метод: фіксовані мазки обробляють 2 хв у вологій камері

тушшю, змішаною з протихолерною сироваткою, промивають і мікроскопують.

Холерні вібріони фарбуються в чорний колір.

Для швидкого і надійного виявлення холерних вібріонів у різних об’єктах

навколишнього середовища, особливо тих, що погано або зовсім не культивують-

ся, використовують метод полімеразної ланцюгової реакції.

Одночасно з бактеріоскопією проводять посів досліджуваного матеріалу в

рідкі і на щільні живильні середовища. З рідких

середовищ найчастіше використовують 1 % луж-

ну пептонну воду з телуритом калію і середовище

Монсура, з щільних – лужний МПА, селективні

середовища TCBS, Аронсона, Монсура. Посіви

роблять в 1 % пептонну воду, лужний МПА і на

одне з селективних середовищ (краще всього

TCBS). При доставленні матеріалу в транспортно-

му середовищі з нього роблять висів у 50 мл 1 %

пептонної води pH 9.3 (середовище збагачення).

Середовище Аронсона: МПА, до якого добав-

ляють сахарозу і фуксин, знебарвлений сульфітом

натрію.

Рис. 66. Холерні вібріони

у мазку з випорожнень.

217

Розділ 11. Мікробіологічна діагностика окремих інфекційних захворювань

Середовище Монсура: на 1 літр дистильованої води беруть 15 г агар-агару, 1

г желатину, 10 г хлориду натрію, 50 г таурохолату натрію, 30 г карбонату натрію.

Середовище TCBS ( тіосульфат-цитрат-бромтимол сахарозний агар) має стан-

дартний склад, випускається в готовому сухому вигляді. На 1 л дистильованої води

додають 69 г сухого порошку.

Другий етап. Через 5-6 год інкубації посівів у термостаті виготовляють ма-

зок з поверхні рідкого середовища, висячу краплю для визначення рухливості й

проводять орієнтовну реакцію аглютинації на склі з O1 (або RO, O139) діагнос-

тичною сироваткою (“слайд-аглютинація”).

Одночасно роблять висів з 1% пептонної води на лужний МПА або інші се-

лективні середовища з метою отримання ізольованих колоній. При відсутності

видимого росту в першій пептонній воді проводять висів з неї в другу пептонну

воду (в разі первинного посіву в середовище збагачення з pH 9,3 подальший висів

з нього проводять через 14-20 г). Посіви в рідкі і на щільні середовища проводять

великою бактеріологічною петлею діаметром 5 мм. За результатами дослідження

видають попередню відповідь про виявлення холерного вібріона.

Третій етап. Висів із другого середовища збагачення проводять на лужний

МПА (або на одне з елективних щільних середовищ) через 5-6 г при pH 7,8 і через

14-20 год при pH 9,3.

Четвертий етап. Через 16-24 год вирощування посівів на щільних електив-

них середовищах проводять макро- і мікроскопічне дослідження ізольованих ко-

лоній та пересів на двовуглеводне середовище Ресселя (лактозно-сахарозний агар)

або на тривуглеводне середовище Кліглера (глюкозо-лактозо-сахарозний агар) з

метою виділення чистої культури та її ідентифікації.

Колонії холерних вібріонів на лужному МПА в типовій S-формі мають роз-

міри 2-3 мм, круглі, гладенькі, плоскі, голубуваті, прозорі, гомогенні, з рівними

краями, маслянистої консистенції, легко знімаються петлею і емульгуються. При

посіві матеріалів від хворих, що приймали антибіотики, та віброносіїв, можуть

виростати атипові колонії. На агарі Аронсона колонії холерних вібріонів мають

яскраво-червоний колір, на середовищі TCBS вони жовті на зеленому фоні, на

середовищі Монсура колонії без кольору, напівпрозорі, з темним центром. З коло-

ніями на лужному МПА ставлять пробу на оксидазу, а з тими колоніями, що ви-

росли на елективних середовищах, цю пробу ставити недоцільно.

При відборі колоній використовують індикаторні папірці (СІП-1 – набір для

ідентифікації вібріонів). Оксидазопозитивні колонії перевіряють в “слайд аглю-

тинації” з холерною сироваткою О1 (RO,O139) в розведенні 1:100 і варіантоспе-

цифічними сироватками Інаба і Огава (1:50) готують мазки для забарвлення за

Грамом і обробляють люмінесцентною сироваткою. Позитивні результати дають

право видати попередню відповідь про виявлення холерного вібріона.

П’ятий етап. Досліджують характер росту на полівуглеводних середовищах.

Холерний вібріон на агарі Ресселя змінює колір стовпчика при збереженні первіс-

ного кольору скошеної частини без утворення газу. Середовище Кліглера жовтіє

повністю без утворення газу і сірководню. Культури перевіряють за морфологіч-

218

Частина ІІІ. Спеціальна мікробіологія

ними і аглютинабельними властивостями, а в разі потреби визначають групу за

Хейбергом (табл. 43).

Таблиця 43

Біохмічна характеристика за Хейбергом

Г р у п и

Вуглеводи

1 2 3 4 5 6 7 8

Манноза + - + - + - + -

Сахароза + + + + - - - +

Арабіноза - - + + - - + -

Тести V. сholere V. еltor

Гемоліз еритроцитів барана + ±

Аглютинація курячих еритроцитів + ±

Ріст на агарі з поліміксином (30 од/мл) – +

Лізис холерним фагом С + –

Лізис фагом Ельтор-2 – +

Реакція Фогеса-Проскауера – +

–

Ставлять також розгорнуту об’ємну реакцію аглютинації в пробірках за

загальноприйнятою методикою відповідно з інструкцією до діагностичної сиро-

ватки. При відсутності реактивів на оксидазу можна використати пробу “тяжа”.

На предметне скло наносять краплю 0,5% водного розчину дезоксихолату натрію

або 2,5% розчину миючого засобу “Прогрес”, додають повну петлю агарової куль-

тури досліджуваних вібріонів і ретельно перемішують. При позитивній реакції

суспензія негайно втрачає мутність, стає слизовою і в’язкою – тягнеться за пет-

лею у вигляді тяжа, що характерно для вібріонів.

Останнім часом розроблені тести для диференціації класичного варіанту хо-

лерного вібріона від біовару ельтор (табл. 44).

Таблиця 44

Основні відмінності між V. сholere і V. еltor

Чутливість виділених культур холерних вібріонів до антибіотиків та хіміоте-

рапевтичних препаратів визначають за допомогою методу дифузії в агар з викори-

станням стандартних дисків або методом серійних розведень.

Шостий етап. Остаточно враховують результат ідентифікації чистих куль-

тур і видають остаточну відповідь про виділення холерного вібріону серогрупи:

О1, RO (Інаба, Огава, Гікошима) або 0139. Якщо виділені вібріони за більшістю

ознак відносяться до холерних, але не аглютинуються сироватками, видають

відповідь про виділення холерних вібріонів не О1 групи (так званих НАГ-вібріонів).

Обов’язково відмічають гемолітичну активність, чутливість до антибіотиків і лізис

культури відповідним бактеріофагом.

Методи прискореної діагностики. Найкращим є люмінесцентно-серологі-

чний метод, він дає можливість через 1,5-2 год виявити холерних вібріонів у дослі-

джуваному матеріалі, а також у середовищі після підрощування в кількості 10

219

Розділ 11. Мікробіологічна діагностика окремих інфекційних захворювань

мікробних клітин в 1 мл. Методика виготовлення мазків, обробка люмінесцент-

ною сироваткою, мікроскопія та оцінка результатів є загальною для виявлення

всіх видів бактерій. Вона викладена в інструкції, що додається до сироватки.

За допомогою методу іммобілізації вібріонів під впливом специфічної хо-

лерної О1 сироватки можна виявити збудника протягом 15-20 хв при концентрації

його в досліджуваному матеріалі не менше ніж 10

мікр.тіл/мл. На предметне скло

наносять 2 краплі рідких випорожнень, блювотних мас або верхнього шару (плівки)

з середовища накопичення. Першу краплю накривають покривним скельцем (кон-

троль), до другої додають краплю холерної 01 сироватки (1:100), перемішують і

також накривають покривним скельцем. Надавлені краплі досліджують під фазо-

во-контрастним мікроскопом або використовують темнопольний конденсор. При

наявності в пробах холерних вібріонів у першій краплі видно характерний рух, у

другій – іммобілізація мікробних тіл та їх аглютинація.

Для прискореної діагностики застосовують також чутливу реакцію непрямої

гемаглютинації з використанням холерного антитільного еритроцитарного діаг-

ностикуму.

Метод масового дослідження на вібріононосійство проводять під час епі-

демічних спалахів холери. Випорожнення одночасно забирають з прямої кишки

алюмінієвими петлями від 10 чоловік, раціонально згрупованих, і вносять їх в

одну колбу з 200 мл лужної пептонної води і 01 холерною аглютинуючою сироват-

кою, розведеною до половини титру. Інкубацію проводять при 37 °С протягом 3-4

годин. Холерні вібріони, що розмножились, починають аглютинуватись і у ви-

гляді пластівців опадають на дно колби. При позитивному результаті матеріал заби-

рають від кожної з 10 осіб і досліджують роздільно. Такий метод дає значну еко-

номію живильних середовищ і робочого часу бактеріологів.

Серологічні дослідження мають лише допоміжне значення і зводяться до

визначення в сироватці хворих і вібріоносіїв вібріоцидних антитіл, аглютинінів

та антитоксинів. Від хворих потрібно брати парні сироватки з інтервалом у 8-10

днів (першу пробу беруть на 3-5 день хвороби).

Найбільш чутливою є реакція визначення вібріоцидинів. Ці антитіла визна-

чаються з 3-го дня захворювання в титрах 1:100-1:1000 і максимально наростають

до 10-12-го дня. При постановці реакції спочатку ізотонічним розчином хлориду

натрію розводять комплемент 1:20 і розливають його в ряд пробірок по 0,9 мл.

Потім в першу пробірку вносять 0,1 мл сироватки хворого, перемішують і послі-

довно переносять по 0,1 мл до розведення 10

-10

, отримуючи десятикратні розве-

дення в об’ємі 0,9 мл. У кожну пробірку додають по 0,1 мл суспензії культури

холерного вібріона, в якій міститься 1-2 тис. мікробних клітин. Реакцію супро-

воджують відповідними контролями комплементу, сироватки і культури. Пробірки

витримують при 37 °С протягом 60 хв і роблять висіви з них на сектори агару в

чашках Петрі, інкубують у термостаті 18-20 год і підраховують кількість вироще-

них колоній. Титром вібріоцидних антитіл вважають максимальне розведення

сироватки, яке спричиняє загибель не менше 50 % вібріонів у порівнянні з кількістю

колоній, що виросли після висіву з пробірки контролю комплементу.

220

Частина ІІІ. Спеціальна мікробіологія

Протихолерні аглютиніни виявляють за допомогою розгорнутої реакції аг-

лютинації. Досліджувану сироватку розводять 1% лужною пептонною водою в

об’ємі 1 мл від 1:10 до 1:640. Антигеном служить 3-годинна бульйонна культура

холерного вібріона, який виділили в даному вогнищі. У два ряди пробірок з роз-

титрованими парними сироватками вносять по 1 краплі культури і ставлять на

60 хв у термостат при 37 °С, потім до ранку в холодильник, після чого враховують

результати. Реакцію супроводять, як звичайно, контролями сироватки і антигена.

Результат вважають орієнтовно позитивним при аглютинації першою сироваткою

в розведенні 1:40 і вище. Діагностичне значення має не менше ніж 4-кратне наро-

стання титру антитіл у реакції з другою сироваткою.

Більш чутливою і специфічною вважають двокомпонентну реакцію непря-

мої гемаглютинації з еритроцитарним холерним діагностикумом. Необхідні ком-

поненти реакції та методика її постановки в макро- та мікрооб’ємах наведені в

інструкції до діагностикуму. Обов’язково потрібно ставити і цю реакцію методом

парних сироваток. Діагностичне значення має принаймні 4-кратне наростання

титру антитіл у динаміці.

Визначення антитоксинів у сироватці крові проводять за допомогою непря-

мої гемаглютинації. Досліджувану сироватку розводять мікро- або макрооб’єм-

ним способом і додають еритроцитарний холерний ентеротоксичний діагности-

кум. Діагностичним титром вважають розведення сироватки 1:160. Доцільно дос-

ліджувати парні сироватки.

Дослідження матеріалів довкілля. Найчастіше досліджують воду відкри-

тих водоймищ, водопровідну воду, гідробіонтів, харчові продукти, мух, змиви з

різних предметів.

У досліджувану воду (дві проби по 500 мл) додають розчин основного пепто-

ну до 1% концентрації, інкубують 5-8 год при 37 °С і досліджують поверхневу

плівку так само, як і плівку з пептонної води після посіву випорожнень чи блю-

вотних мас. Надійніші результати отримують при використанні методу фільтрації

через мембранні фільтри № 2 або 3, змиви з яких після фільтрування води засіва-

ють у лужну пептонну воду і на селективні середовища. При цьому досліджують

великі кількості води (1,5-2,5 л). Із змиву з фільтрів можна також робити мазки

для забарвлення їх люмінесцентною холерною сироваткою, а також ставити реак-

цію непрямої гемаглютинації.

Від гідробіонтів після їх розтину сіють жовчний міхур, шлунок і кишечник

(після їх гомогенізації) в 1% лужну пептонну воду і на елективний агар. Дафній і

рачків розтирають у ступці і засівають петлею в 1 % пептонну воду.

Тверді харчові продукти подрібнюють, розтирають у ступці з ізотонічним

розчином хлориду натрію і засівають у кількості 10 г у 50-100 мл 1 % пептонної

води та на агарові середовища. Молоко і молочні продукти, змиви з об’єктів дов-

кілля та мух засівають в 1% пептонну воду і досліджують за звичайною схемою.

У різних об’єктах навколишнього середовища можуть знаходитись і інші

представники родини Vibrionaceae, морфологічно подібні до вібріонів. Особливо

це стосується родів Aeromonas, Pseudomonas і Plesiomonas. Відрізнити їх від хо-