Шкарин В.В., Шафеев М.Ш. Дезинфектология.Руководство для студентов медицинских вузов и врачей

Подождите немного. Документ загружается.

Продолжение табл. 20

Помещения ЛПУ Обследуемые объекты

Комната для вторич-

ной обработки ново-

рожденных

Комната сбора, пас-

теризации и хране-

ния грудного молока

Послеродовая палата

Приемное отделение

Весы, клеенка детского пеленального столика, детская кро-

вать, аппарат искусственной вентиляции легких, насадка и

шланг кислородной подводки

Рабочий стол для чистой посуды, внутренняя поверхность хо-

лодильника для хранения молока, емкость для сцеживания

молока, молокоотсосы, марлевая салфетка для укупорки бу-

тылочек (на стерильность), воронки, соски, внутренняя по-

верхность кастрюли для пастеризации молока, стерильные

бутылочки для грудного молока и питьевых растворов,

грудное молоко

Клеенка или пеленка, используемая роженицей при кормлении

новорожденного, комплект чистого постельного и нательного

белья, емкость для сцеживания грудного молока

Клеенка на кушетку, чистые мочалки, бритвы, рабочий меди-

цинский стол, предметы ухода за больными

го агара и на среду Эндо. Посевы выдерживают в термостате при темпера-

туре 37°С. Результаты учитывают через 48 ч. Дезинфекцию считают эффек-

тивной при отсутствии роста микроорганизмов.

В акушерских стационарах обязательным является бактериологичес-

кий контроль подвергнутого пастеризации грудного молока, растворов для

питья и масла для обработки кожи новорожденных. Колититр пастеризо-

ванного грудного молока должен быть не ниже 11,1 см

, общее микробное

число — не более 500, золотистый стафилококк должен отсутствовать в

1 мл. Растворы для питья новорожденных и масло для обработки кожи дол-

жны быть стерильными.

Контроль за состоянием аутофлоры кожи, обсемененности нательного

и постельного белья больных и спецодежды персонала асептических отде-

лений проводится 1 раз в месяц лабораторией ЛПУ путем взятия проб ме-

тодом отпечатков старшей медицинской сестрой отделения. Бактериоло-

гический контроль эффективности обработки кожи операционного поля и

рук медицинского персонала проводится выборочно старшей операцион-

ной сестрой 1 раз в неделю. В смывах с рук персонала, инвентаря, санитар-

ной одежды бактерии группы кишечной палочки и золотистый стафило-

кокк должны отсутствовать.

Бактериологический контроль санитарного состояния аптек осуществ-

ляется персоналом лаборатории ЛПУ не реже двух раз в квартал. Объекта-

ми бактериологических исследований являются вода дистиллированная,

инъекционные растворы до стерилизации, инъекционные растворы после

стерилизации, глазные капли после стерилизации, глазные капли на сте-

рильных основах, сухие лекарственные вещества для приготовления инъ-

екционных растворов, аптечная посуда, пробки , прокладки, прочие вспо-

^ 73 ^

могательные материалы: инвентарь, оборудование, руки и специальная

одежда персонала, воздушная среда. При исследовании аптечной посуды

количество мезофильных аэробов и факультативных анаэробов не должно

быть более 150 колоний в 10 см

смывной жидкости, бактерии группы ки-

шечной палочки не должны обнаруживаться.

Таким образом, дезинфекции в ЛПУ подлежат те объекты, которые

могут иметь эпидемиологическое значение в распространении внутриболь-

ничных инфекций: поверхности в помещениях (пол, стены, дверные ручки,

подоконники и др.), поверхности приборов, оборудования, предметы ухода

за больными, ИМН, воздух в помещениях, посуда столовая и лаборатор-

ная, белье нательное и постельное, постельные принадлежности (подушки,

матрацы), выделения больных и т.п.

Дезинфекцию проводят с целью уничтожения патогенных и условно-

патогенных микроорганизмов.

Для дезинфекции в ЛПУ рекомендуется использовать физический и

химический методы. Обработку объектов следует проводить в соответствии

с инструктивными документами различными способами: орошением, про-

тиранием, замачиванием, засыпкой, кипячением, путем обработки в дезин-

фекционных камерах.

В соответствии с «Основами законодательства Российской Федерации

об охране здоровья граждан» от 18.06.93 г. (ст. 43) в практике здравоохра-

нения используются только те дезинфицирующие средства, которые разре-

шены к применению в установленном порядке.

Ответственность за проведение и организацию дезинфекционных ме-

роприятий в ЛПУ несет руководитель учреждения, который должен руко-

водствоваться действующими инструктивно-методическими документами

и приказами.

Предстерилизационная очистка

Второй этап обработки изделий многократного использования — пред-

стерилизационная очистка, которую проводят для удаления белковых, жи-

ровых, лекарственных, механических загрязнений после дезинфекции и

последующего отмывания инструментов от остатков дезинфектантов. Пред-

стерилизационная очистка обеспечивает эффективность последующей сте-

рилизации и безвредность использования простерилизованных изделий,

снижает риск пирогенных реакций.

Предстерилизационная очистка осуществляется ручным или механи-

зированным (с помощью специального оборудования) способом.

Механизированная предстерилизационная очистка должна прово-

диться струйным, ротационным методами, с применением ершей или уль-

тразвука, с использованием ПАВ. Методика проведения очистки медицин-

ских инструментов и аппаратуры должна соответствовать инструкции по

эксплуатации, прилагаемой к оборудованию, а используемые для пред-

стерилизационной очистки средства разрешены к применению (приложе-

ние 6).

Разъемные изделия должны подвергаться предстерилизационной очи-

стке в разобранном виде.

При ручной очистке процесс включает ряд операций:

1. Замачивание в моющем растворе при полном погружении изделия в

разобранном виде с обязательным заполнением всех каналов и полостей на

15—60 мин (в зависимости от применяемого средства).

При любом способе очистки ИМН могут применяться только те мою-

щие средства, которые отвечают следующим требованиям:

• хороший моющий эффект при минимальном пенообразовании;

• отсутствие пирогенности,

• отсутствие токсичности;

• хорошая смываемость с изделий;

• отсутствие коррозионного действия.

В качестве моющих средств в настоящее время применяют Биолот,

Биолот-1, «Лотос», «Лотос-автомат», «Прогресс», «Астру», Бланизол, Сеп-

тодор, «Луч», «Зифу», Векс-Сайд, «Нику-экстра».

Вместо замачивания в моющем растворе можно использовать кипяче-

ние в 1,5% растворе моющих средств или 2% растворе двууглекислого на-

трия в течение 15 мин.

2. Мойка каждого изделия в моющем растворе при помощи ерша или

ватно-марлевого тампона, тканевой салфетки (шприца — для каналов) в

течение 0,5—1 мин. Температура раствора в процессе мойки не поддержи-

вается. Ершевание резиновых изделий не допускается.

Моющий раствор перекиси водорода с CMC , а также с двууглекис-

лым натрием можно использовать в течение суток с момента изготовле-

ния, если цвет раствора не изменился. Неизмененный раствор можно по-

догревать до 6 раз в течение рабочей смены. Появление розовой окраски

свидетельствует о загрязнении раствора кровью, снижающей эффектив-

ность очистки.

3. Ополаскивание под проточной водой (0,5—10 мин).

Ополаскивание осуществляется в емкостях (ванне, раковине) при по-

мощи устройств для струйной подачи воды, насадок для игл в течение вре-

мени, предусмотренного инструкцией к применяемому средству.

4. Ополаскивание дистиллированной водой в течение 0,5 мин.

5. Сушка горячим воздухом при температуре 85°С до полного исчезно-

вения влаги в воздушном стерилизаторе при открытом вентиляционном

отверстии; в шкафу сушильном стерилизационном — при неплотно закры-

той дверце для колюще-режущих инструментов или на чистом полотенце.

Предстерилизационная очистка ручным способом с применением за-

мачивания в моющем растворе представлена в приложении 7.

В настоящее время существует ряд средств, позволяющих проводить

одновременно, в один этап, дезинфекцию и предстерилизационную очист-

ку инструментов (Лизетол, Дюльбак макси, Виркон, Пероксимед). Исполь-

75 <^>»

зование средств, сочетающих дезинфицирующие и моющие свойства, по-

зволяет сделать процесс очистки инструментов менее трудоемким и сокра-

тить время обработки. Режимы дезинфекции указанными средствами пред-

ставлены в приложении 8.

Контроль качества предстерилизацонной обработки инструментов про-

водится путем постановки проб на наличие остатков крови, полноту отмы-

ва изделий от щелочных компонентов синтетических моющих средств

(CMC) и для определения жировых загрязнений. Контролю подлежит 1%

каждого вида изделий, обработанных за сутки, но не менее 3—5 единиц.

Азопирамовая проба. Азопирам выявляет наличие следов крови, перок-

сидаз растительного происхождения, хлорсодержащих препаратов, стираль-

ного порошка с отбеливателем и ржавчины (окислов и солей железа). Азо-

пирам содержит 10% амидопирин, 0,1—0,15% солянокислый анилин и 95%

этиловый спирт, хранится в плотно закрытом флаконе при температуре +4°С

в холодильнике 2 мес, в темноте при комнатной температуре (10—23°С) не

более одного месяца. Перед постановкой пробы смешивают азопирам и 3%

раствор перекиси водорода в равных по объему количествах и работают этим

реактивом в течение 1—2 ч. Проба с азопирамом по чувствительности в

10 раз превышает амидопириновую.

Лмидопириновая проба. Рабочий раствор для постановки амидопири-

новой пробы представляет собой смесь равных количеств 5% спиртового

раствора амидопирина, 30% раствора уксусной кислоты и 3% раствора пе-

рекиси водорода. С помощью этой пробы определяют качество отмывки

инструментов от остатков крови.

Фенолфталеиновая проба позволяет выявить наличие остаточных ко-

личеств щелочных компонентов моющего препарата. Для реакции исполь-

зуют 1% раствор фенолфталеина.

Пробу с суданом-Ш используют для определения жировых загрязне-

ний на шприцах и других изделиях, связанных с загрязнениями. Рабочий

раствор для постановки пробы может храниться 6 мес в холодильнике в

плотно закрытом флаконе.

Методика постановки проб и учет результатов. На контролируемое

изделие наносят 2—3 капли реактива и протирают его тампоном. Для конт-

роля труднодоступных мест применяют ватные турунды, смоченные в ре-

активе. Для проверки шприца в него наливают реактив и несколько раз про-

двигают поршень, смачивая его стенки, затем вытесняют реактив на марле-

вую салфетку или вату. Для проверки игл реактив наливают в шприц, не

давший положительной пробы, последовательно сменяя иглы, пропускают

реактив через них, выдавливания по 3—4 капли на марлевую салфетку. Для

контроля качества обработки катетеров и других полых изделий в них пи-

петкой (чистым шприцем) вводят реактив, и по истечении некоторого вре-

мени жидкость сливают на марлевую салфетку.

При положительной азопирамовой пробе возникает фиолетовое окра-

шивание, быстро, в течение нескольких секунд, переходящее в розово-си-

реневое или буроватое. Окрашивание, наступившее позже чем через 1 мин,

^» 76

не учитывается. Буроватое окрашивание появляется при наличии ржавчи-

ны и хлорсодержащих окислителей, в остальных случаях окрашивание ро-

зово-сиреневое.

При положительной амидопириновой пробе возникает сине-зеленое

окрашивание. Фенолфталеиновая проба при наличии неотмытых компо-

нентов синтетических моющих средств дает розовое окрашивание. При про-

верке шприцев на наличие жировых загрязнений внутрь вносят 3—5 мл

реактива с суданом-Ш, смачивая им всю внутреннюю поверхность. Через

10 с краску смывают обильной струей воды. Желтые пятна и потеки указы-

вают на наличие жировых загрязнений.

При положительных пробах вся партия контролируемых изделий под-

лежит повторной обработке до получения отрицательных результатов.

Самоконтроль в ЛПУ проводится ежедневно. Организует и осуществ-

ляет контроль старшая медицинская сестра ЦСО. Результаты контроля от-

ражают в журнале по форме № 366у.

Стерилизация

Стерилизация обеспечивает полное освобождение вещества или пред-

мета от микроорганизмов. Поскольку наибольшую устойчивость проявля-

ют споры микроорганизмов, то стерилизующими являются средства, ока-

зывающие бактерицидное, вирулицидное и спороцидное действие. Все ме-

роприятия по стерилизации проводятся согласно МУ 287-113 от 30.12.98.

Стерилизуют все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, кон-

тактирующие с кровью или инъекциоными препаратами, а также медицин-

ские инструменты, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со сли-

зистой оболочкой и могут вызвать ее повреждение.

Стерилизация является основой асептики.

Асептика — это система мероприятий, направленных на профилактику

инфицирования ран, тканей, органов, полостей тела больного при хирурги-

ческих вмешательствах, перевязках, эндоскопических и других лечебных и

диагностических манипуляциях.

Асептика тесно связана с антисептикой. В 1-й главе мы подробно оста-

навливались на отличительных признаках стерилизации и антисептики.

Под антисептикой подразумевается применение различных препара-

тов (в основном химических) для обеззараживания рук медицинского пер-

сонала, кожи операционного поля и места инъекции лекарственных

средств через кожные покровы, а также непосредственно раневых поверх-

ностей. Основные требования к антисептическим средствам — широкий

спектр антибактериальной активности при минимальном побочном дей-

ствии. Примером современных антисептиков является хлоргексидина

биглюконат, Аминадерм, Асептинол С, Асептинол спрей, Декосепт, Кута-

септ Ф, Октенидерм, Октениман, Пливасепт, Сагросепт, Стериллиум, Дег-

мицид.

Отождествлять или противопоставлять асептику и антисептику не-

правомерно. Оба эти понятия взаимосвязаны и дополняют друг друга при

осуществлении комплекса мероприятий, направленных на предупрежде-

ние гнойно-септических заболеваний во всех областях лечебной деятель-

ности (хирургии, акушерства, гинекологии, педиатрии, стоматологии, уро-

логии).

Методы стерилизации изделий

медицинского назначения

Стерилизация является третьим этапом обработки ИМН. Для ее про-

ведения используют физический и химический методы. Физический метод

предполагает использование термических (паровой, воздушный), радиаци-

онных (гамма-излучение) способов стерилизации; химический — приме-

нение газов и растворов химических препаратов.

Радиационный способ и химический метод стерилизации называют хо-

лодными, так как процесс стерилизации идет при температуре ниже 100°С.

Методы и способы стерилизации и условия ее проведения представле-

ны в табл. 21, а классификация медицинских стерилизаторов — на рис. 6.

Физический метод стерилизации

Паровой способ

Стерилизующим агентом при паровом способе стерилизации является

водяной насыщенный пар под избыточным давлением. Стерилизацию про-

водят в паровых стерилизаторах (автоклавах) в двух режимах:

1) температура 132±2°С при давлении пара 0,2 МПа (или 2 атм), время

выдержки 20 мин;

2) температура 120±2°С, давление 0,11 МПа (1,1 атм), время выдержки

45 мин.

Насыщенный водяной пар под давлением быстро уничтожает микро-

бы в результате коагуляции протеина внутри бактериальной клетки. Для

получения пара лучше использовать дистиллированную воду, которая сво-

бодна от солей и дает меньше осадка в аппаратах.

Паровые стерилизаторы делятся на шкафные и цилиндрические, пос-

ледние разделяются на вертикальные и горизонтальные. В вертикальные

загружают и выгружают изделия сверху. Горизонтальные бывают непроход-

ные (однодверные, односторонние) и проходные (двухдверные, двухсто-

ронние). В последнее время выпускают стерилизаторы с автоматическим

регулятором давления пара или с полной автоматизацией всего цикла сте-

рилизации с момента закрытия двери до окончания всего процесса.

В стерилизационную камеру закладывают стерилизационные коробки

(биксы), которые изготовлены из тонкого листа металла, могут быть квад-

Таблица 21

Методы и способы стерилизации ИМН

Методы

и способы

Темпе-

ратура, °С

Время,

мин

Вид изделий

Условия проведения

стерилизации

Применяемое

оборудование

Химич. тесты

для контроля

температ. режимов

Физический

Паровой

132+2

(давление

0,2МПа)

120+2

(давление

0,11

МПа)

20+2

45+3

Из коррозиестойкого

металла, стекла, тексти •

ля

Из резины, латекса и от-

дельных полистироль-

ных материалов (поли-

этилен высокой прочно-

сти, ПВХ-пластикаты)

В стерилизационных ко-

робках без фильтров или

с фильтром или в двойной

мягкой упаковке из бязи,

пергамента, бумаги ме-

шочной непропитанной,

бумаги мешочной влаго-

прочной, бумаги для упа-

ковывания продукции на

автоматах марки Е

Паровой сте-

рилизатор

Карбид, сера чистая,

мочевина с красите-

лями, никотинамид с

красителями, манноза

с красителями, термо-

индикаторная краска

Бензойная кислота,

сера элементарная без

красителя, термоин-

дикаторная краска

Воздушный

Ионизирую-

щие излуче-

ния

180+3

160+2

60+5

150+5

Из металла, стекла и си-

ликоновой резины

Из металла, стекла и си-

ликоновой резины, пер-

чатки, зубные боры, иг-

лы для акупунктур

Промышленные изделия

одноразового примене-

ния

Стерилизации подвергают

сухие изделия. Стерилиза-

цию проводят в упаковке

из бумаги мешочной не-

пропитанной, бумаги ме-

шочной влагопрочной, бу-

маги для упаковывания

продукции на автоматах

марки Е или без упаковки

(в открытой емкости)

Воздушный

стерилизатор

Воздушный

стерилизатор

Винная кислота без

красителя, тиомоче-

вина без красителя,

гидрохинон без крас-

ки

Продолжение табл. 21

Методы и

способы

Темпе-

ратура, °С

Время,

мин

Вид изделий

Условия проведения

стерилизации

Применяемое

оборудование

Химич. тесты

для контроля

температ. режимов

Химический

Растворами:

Дезоксон-1

Дезоксон-4

перекись

водорода, 6%

45+5

360+5

180+5

Из полимерных мате-

риалов, стекла, резины,

коррозиестойких метал-

лов

Из металла

Стерилизация должна про-

водиться при полном по-

гружении в р-р на время

стерилизационной вы-

держки, после чего изделие

должно быть промыто сте-

рильной водой

Закрытые ем-

кости из стек-

ла, пластмас-

сы или по-

крытые эма-

лью

Сайдекс

глутаровый

альдегид,

2,5%

акт. р-р

240+5

600+5

360+5

Из металла

Для остальных изделий

Инструментарий к гиб-

ким эндоскопам

Хранят простерилизован-

ные изделия в стерильной

емкости (стерилизацион-

ной коробке), выложенной

стерильной простыней, не

более 3 сут

Газовый:

пары 40%

р-ра фор-

мальдегида в

этиловом

спирте

180+5

120+5

Из полимерных мате-

риалов (резины, пласт-

масс), из стекла, металла

В упаковке из двух слоев

полиэтиленовой пленки

толщиной 0,06—0,2 мм,

перг аменте, бумаге ме-

шочной непропитанной,

бумаге мешочной влаго-

ирочной, бумаге для упа-

Стационар-

ный форма-

линовый сте-

рилизатор

смесь ОБ

(окись этиле-

на с броми-

стым этилом)

в соотноше-

нии 1:2,5

окись эти-

лена

35+5

55+5

>18

отн.влаж-

ность не

80%

240+5

360+5

960+5

ос

Для оптики,кардиости-

муляторов

Для изделий из резины,

пластмасс, стекла, ме-

талла

Для пластмассовых ма-

газинов к сшивающим

аппаратам

Для изделий из поли-

мерных материалов,

стекла, металла

ковывания продукции на

автоматах марки Е

Срок хранения в полиэти-

леновой пленке 5 лет, в ос-

тальных случаях до 20 сут

Стационар-

ный газовый

стерилизатор,

микроанаэро-

стат

Портативный

аппарат, мик-

роанаэростат

Паровые

тепло-

сетевые

Паровые

электри-

ческие

Паровые

электро-

огневые

Паровые

огневые

Горизонтальные

Круглые

Прямо-

угольные

Вертикальные

По расположению

загрузочного проема

По форме

стерилизац.

камеры

Водо-

паро-

камерные

Стерилизаторы

По условиям

эксплуатации

Односторонние

Двухсторонние

По стерилизующему

агенту

Паровые

Газовые

Воздушные

По источнику

Ъ нароснабжения

Пароавто-

Газовые

номные

Воздушные

электрические

По способу нагрева

Воздушные

электро-

огневые

Воздушные

огневые

По способу

получения пара

Паро-

генераторные

Рис. 6. Классификация медицинских стерилизаторов

ратными или круглыми по форме, с крышкой на петлях, с фильтром или

без него. В качестве фильтров используют лавсан — эффективность пыле-

задержания 98,7%. Биксы имеют в своих стенках отверстия, которые от-

крываются во время стерилизации и закрываются специальным поясом

после стерилизации.

Паровым способом стерилизуют общие хирургические и специальные

инструменты, детали приборов и аппаратов из коррозионно-стойких метал-

лов, стекла, шприцы с пометкой 200°С, хирургическое белье, перевязочный