Журнал - Проблемы криобиологии 2010 №4

Подождите немного. Документ загружается.

449

problems

of cryobiology

Vol. 20, 2010, №4

проблемы

криобиологии

Т. 20, 2010, №4

After cryopreservation of PC samples with DMAc/

1,2-PD, DMAc/glycerol and DMAc/OEG

n = 5

solution

the retraction of platelet clot was significantly higher

in the case of the freezing regimen 2.

After freezing of PC samples by a direct plunging

the containers into liquid nitrogen (regimen 3) the plate-

lets completely lost the aggregation ability, and were

characterized with low HSR rate and retraction of

platelet clot (Fig. 2, 4, 5).

The analysis of peculiarities of thermogram for two

freezing regimens and their correlation with results of

PC cryopreservation enable to suggest that freezing

regi-men 1 has such adverse factors as prolonged

crystalli-zation plateau and appearance of supercooling.

This is confirmed with similar indices of platelet

morphofunctional integrity, obtained after PC samples

freeze-thawing using controlled-rate slow cooling with

the programmed freezer [2]. PC cryopreservation with

the freezing regimen 2 is more preferable, since it

provides higher indices of platelet morphofunctional

integrity. We suggest that placing the containers with

platelet suspension onto the stowage in liquid nitrogen

vapors at –188… −193°C provides an intensive local

cooling of the container walls, that enables the freezing

regimen 2 to avoid completely the supercooling and

promote the rapid passing through the crystallization

plateau (1–2.5 min). It should be noticed that this

method is used to control the onset of water-ice phase

[2], так и медленного нерегулируемого охлаждения

в парах жидкого азота (режим 1). Возможно, это

обусловлено несколькими причинами: предпочти-

тельностью использования медленных скоростей

охлаждения применительно к замораживанию с

криопротектором ДМСО, что справедливо и для

других клеточных суспензий; целесообразностью

выдерживания определенной длительности плато

кристаллизации при замораживании тромбоцитов

с ДМСО [15–17].

Результаты криоконсервирования тромбоцитов,

полученные в данной и других работах [2, 3],

свидетельствуют об эффективности криозащитных

сред, содержащих комбинации криопротекторов.

Тем более, что объектом замораживания были КТ,

хранившиеся 12–16 ч после выделения и в которых

в определенной степени могли развиться повреж-

дения – “storage lesion” [7].

Выводы

Таким образом, данные настоящей серии экспе-

риментов свидетельствуют о более высоких и ста-

бильных результатах криоконсервирования тром-

боцитов с комбинированными криозащитными

средами при использовании режима замора-

живания с высокими скоростями охлаждения, а

также при отсутствии переохлаждения и быстром

прохождении плато кристаллизации.

Рис. 5. Ретракция криоконсервированных тромбоцитов

в зависимости от режима замораживания (М ± у, n = 5):

– режим 1; – режим 2; – режим 3; #, * – отличия ста-

тистически достоверны по сравнению с соответствую-

щим показателем для режимов 1 и 2 соответственно,

< 0,05.

Fig. 5. Retraction of cryopreserved platelets depending on

freezing regimen (М ± у, n = 5): – regimen 1; – regimen 2;

– regimen 3; #, * – differences are statistically significant

if compared with corresponding index for regimens 1 and 2

correspondingly, P

< 0,05.

100

Ретракция, %

Retraction, %

Контроль

Control

ДМАц/

1,2-ПД

DMAс/

1,2-PD

ДМАц/

глицерин

DMAс/

glycerol

ДМАц/

ОЭГ

n = 5

DMAс/

ОEG

n = 5

ДМСО

DMSO

Рис. 4. Степень РГШ криоконсервированных тромбо-

цитов в зависимости от режима замораживания (М ± у,

n = 5): – режим 1; – режим 2; – режим 3; #,* – отличия

статистически достоверны по сравнению с соответст-

вующим показателем для режимов 1 и 2 соответственно,

< 0,05.

Fig. 4. HSR extent of cryopreserved platelets depending on

freezing regimen (М ± у, n=5): – regimen 1; – regimen 2;

– regimen 3; #, *– differences are statistically significant

if compared with corresponding index for regimens 1 and 2

correspondingly, P

< 0,05.

100

Степень РГШ, %

HSR level, %

Контроль

Control

ДМАц/

1,2-ПД

DMAс/

1,2-PD

ДМАц/

глицерин

DMAс/

glycerol

ДМАц/

ОЭГ

n = 5

DMAс/

ОEG

n = 5

ДМСО

DMSO

450

problems

of cryobiology

Vol. 20, 2010, №4

проблемы

криобиологии

Т. 20, 2010, №4

Литература

Аграненко В.А., Компаниец А.М., Балезина Л.В. Выде-

ление концентратов тромбоцитов из ЛТС донорской кро-

ви и их консервирование // Гематология и трансфу-

зиология.– 1991.– Т.36, №3.– С.29–32.

Богданчикова О.А., Гурина Т.М., Компаниец А.М. Замора-

живание тромбоцитов в криозащитных средах, содержа-

щих различные комбинации криопротекторов // Пробле-

мы криобиологии.– 2008.– Т. 18, №1.– С.109–113.

Богданчикова О.А., Компаниец А.М. Криоконсерви-

рование тромбоцитов. 1. Разработка криоконсервантов

на основе комбинаций криопротекторов и исследование

их эффективности // Проблемы криобиологии.– 2009.–

Т.19, №3.– С.324–337.

Воробьева Г.С., Компаниец А.М., Ивашков В.И. Разработка

метода криоконсервирования тромбоцитов с ДМАЦ для

клинических целей // Консервирование крови и ее компо-

нентов / Под ред. О.К. Гаврилова, В.А. Аграненко.– М.,

1981.– С. 77–78.

Компанієць А.М., Ніколенко О.В., Кощій С.В. Цитотоксич-

ність і кріозахисна ефективність алкоксипохідних гліце-

рину при заморожуванні тромбоцитів // Тези I З’їзду Укр.

товариства кріобіології і кріомедицини.– Харків, 1995.–

С. 105–107.

Компанієць А.М., Книш О.В., Гуріна Т.М. та інш. Дос-

лідження морфофункціональної збереженості тромбо-

цитів на етапах кріоконсервування // Проблемы криобио-

логии.– 2006.– Т.16, №2.– С. 182–191.

Компаниец А.М. Консервирование концентратов тромбо-

цитов и их лечебная эффективность: Автореф. дис. …

д-ра мед. наук.– М., 1992.– 52 с.

Олейник С.Т. Инициирование фазового перехода вода-

лед в биологических системах при низкотемпературной

консервации: Автореф. дис. … канд. биол. наук. – Харь-

ков, 1987.– 16 с.

Пушкарь Л.Н., Абергауз Н.Н., Воробьева Г.С. и др.

Экспериментальное изучение криоконсервирующих

растворов с ДМАЦ для долгосрочного хранения тромбо-

цитов и лейкоцитов // II Всесоюзный съезд гематологов и

трансфузиологов.– М., 1985.– С. 63–64.

Ронин В.С. Способ окраски тромбоцитов для подсчета в

счетной камере // Лаб. дело.– 1983.– №1.– С. 61–62.

Пат. № 15014 Україна, МПК

А0N 1/02. Спосіб видалення

кріопротектора із суспензії тромбоцитів / В.І. Грищенко,

А.М. Компанієць, О.В. Книш. Заявлено 18.11.05; Опубл.

15.06.06. – Бюл. №6.

Пат. № 3664 Україна, МПК

А61К 35/14. Спосіб консерву-

вання тромбоцитів / А.М. Компанієць, О.В. Ніколенко,

С.Т. Олійник та інш. Заявлено 22.03.93; Опубл. 27.12.94.–

Бюл. №6.

Arnaud F.G., Pegg D.E. Cryopreservation of human platelets

with 1.4 M glycerol at –75 degrees C in PVC blood packs //

Thromb. Res.– 1990.– Vol. 57, N6.– P. 919–924.

Arnaud F.G., Pegg D.E. Cryopreservation of human platelets

with propane-1,2-diol // Cryobiology.– 1990.– Vol. 27, N2. –

P. 130–136.

10.

11.

12.

13.

14.

References

Agranenko V.A., Kompaniets A.M., Balezina L.V. Derivation

of platelet concentrates from LTL of donor’s blood and their

preservation // Gematol. Transfusiol.– 1991.– Vol. 36, N3.–

P. 29–32.

Bogdanchikova O.A., Gurina T.M., Kompaniets A.M. Blood

platelet freezing under cryoprotective media with different

combinations of cryoprotectants // Problems of Cryobiology.–

2008.– Vol. 18, N1.– P. 109–113.

Bogdanchikova O.A., Kompaniets A.M. Platelet cryopreserva-

tion. 1. Development of cryopreservative solutions, based on

cryoprotectant combination and study of their efficiency//

Problems of Cryobiology.– 2009.– Vol. 19, N3.– P. 324–337.

Vorob’eva G.S., Kompaniets A.M., Ivashkov V.I. Designing

the method of platelet cryopreservation with DMAC for clinical

purposes // Preservation of blood and its components / Ed. by

O.K. Gavrilova, V.A. Agranenko.– Moscow, 1981.– P. 77–78.

Kompaniets A.M., Nikolenko O.V., Koschiy S.V. Cytotoxicity

and cryoprotective efficiency of glycerol alkoxyderivatives

under platelet freezing: The 1

Congress of Ukrainian Society

in Cryobiology and Cryomedicine .– Kharkov, 1995.– P. 105–

107.

Kompaniets A.M., Knysh O.V., Gurina T.M. et. al. Study of

morphofunctional integrity of platelets at cryopreservation

stages // Problems of Cryobiology.– 2006.– Vol.16, N2.–

P. 182–191.

transition when preventing the adverse supercooling

of extracellular medium [8].

Freeze-thawing of platelets in presence of DMSO

was more successful if using either controlled-rate slow

cooling [2] or non-controlled-rate slow cooling in liquid

nitrogen vapors (regimen 1). It is likely caused by some

reasons such as: preference of slow cooling rate usage

during the freezing with DMSO, that is also true for

other cell suspensions; expediency of certain duration

of crystallization plateau during platelet freezing with

DMSO [15–17].

The results of platelets’ cryopreservation, reported

in this and other papers [2, 3] testify to the efficiency

of cryoprotective media, containing cryoprotectants’

combinations. Moreover, the objects of freezing were

PCs, stored for 12–16 hrs after derivation and in which

to some extent the ‘storage lesion’ could develop [7].

Conclusions

Thus, the data of these series of the experiments

testify to higher and more stable results of platelet

cryopreservation with the combined cryoprotective

media using the freezing regimens with rapid cooling

rates, as well as during overcooling and rapid passing

through crystallization plateau.

The presented work points to the necessity to con-

tinue the studies of freezing regimens with controlled

and non-controlled cooling rates within the temperature

ranges for determination of the optimal programs of

PC cryopreservation for the application in clinical

practice.

Представленная работа указывает на необ-

ходимость продолжения исследований режимов

замораживания с регулируемыми и нерегулиру-

емыми скоростями охлаждения в разных темпера-

турных диапазонах для определения оптимальных

программ криоконсервирования КТ с целью исполь-

зования в клинической практике.

451

problems

of cryobiology

Vol. 20, 2010, №4

проблемы

криобиологии

Т. 20, 2010, №4

Balint B., Paunovic D., Vucetic D. еt al. Controlled-rate versus

uncontrolled-rate freezing as predictors for platelet cryopre-

servation efficacy // Transfusion.– 2006.– Vol. 46, N2.–

P. 230–235.

Balint B., Vucetic D., Trajkovic-Lakic Z. et al. Quantitative,

functional, morphological and ultrastructural recovery of

platelets as predictor for cryopreservation // Haematologia

(Budap).– 2002.– Vol.32, N4.– P. 363–375.

Balint B., Vucetic D., Vojvodic D. et al. Cell recovery, cryother-

mal micro-damages and surface antigen expression as

predictors for cold-induced GPIbα/CD42b-cluster mediated

platelet clearance after controlled-rate vs. uncontrolled-rate

cryopreservation // Blood Banking Transfus. Med.– 2004.–

Vol. 2, N1.– P. 22–26.

Born G.V.R., Cross M.J. The aggregation of blood platelets //

J. Physiol.– 1963.– Vol. 168, N1.– P. 178–195.

Borzini P., Lazzaro A., Mazzucco L. et al. Platelet cryopreser-

vation using second-messenger effectors and low-dose

(2%) dimethyl sulfoxide. In vitro evaluation of post-thawing

platelet activity with the platelet function analyzer//

Haematologica.– 2000.– Vol. 85, N8.– P. 885–887.

Gao D.Y., Neff K., Xiao H.Y. et al. Development of optimal

techniques for cryopreservation of human platelets. I. Platelet

activation during cold storage (at 22 and 8 degrees C) and

cryopreservation // Cryobiology.– 1999.– Vol. 38, N3.– P. 225–

235.

Currie L.M., Livesey S.A., Harper J.R. et al. Cryopreservation

of single-donor platelets with a reduced dimethyl sulfoxide

concentration by the addition of second-messenger effec-

tors: enhanced retention of in vitro functional activity// Trans-

fusion.– 1998.– Vol. 38, N2.– P. 160–167.

Schiffer C.A., Anderson K. C., Bennett C. L. et al. Platelet

Transfusion for Patients With Cancer: Clinical Practice Guide-

lines of the American Society of Clinical Oncology // Journal

of Clinical Oncology.–2001. Vol. 19, N5.– Р. 1519–1538.

Xiao H., Harvey K., Labarrere C.A. et al. Platelet cryopreser-

vation using a combination of epinephrine and dimethyl

sulfoxide as cryoprotectants // Cryobiology.– 2000.– Vol. 41,

N2.– P. 97–105.

Поступила 16.11.2010

Рецензент И.П. Высеканцев

15.

16.

17.

18.

19.

20.

21.

22.

23.

Kompaniets A.M. Platelet concentrates preservation and their

therapeutic efficiency: Abstract of the thesis of cand. med.

sci.– Moscow, 1992.– 52 p.

Olejnik S.T. Initiation of water-ice phase transition in biological

systems under low-temperature preservation: Author’s

abstract of the thesis of candidate of biological sciences.–

Kharkov, 1987.– 16 p.

Pushkar L.N., Abergauz N.N., Vorob’eva G.S. et. al. Experi-

mental study of cryopreservative solutions with DMAC for

long-term storage of platelets and leukocytes // The 2

All-

Union Congress of Hematologists and Transfusiologists.–

Moscow, 1985.– P. 63–64.

Ronin V.S. Method of platelet staining for calculation in counting

chamber// Lab. Delo.– 1983.– N1.– P. 61–62.

Patent 15014 (Ukraine), IPC8 AON 1/02. Method of cryoprotec-

tant elimination from platelet suspension / V.I. Grischenko,

A.M. Kompaniets, O.V. Knysh. Applied 18.11.05; Publ.

15.06.06.– Bull. N6.

Patent 3664 (Ukraine), IPC5 A61K 35/14. Method of platelet

preservation / A.V. Kompaniets, O.V. Nikolenko, S.T. Olijnyk

et al. Filed 22.03.93; Publ. 27.12.94.– Bull. N6.

Arnaud F.G., Pegg D.E. Cryopreservation of human platelets

with 1.4 M glycerol at –75 degrees C in PVC blood packs //

Thromb. Res.– 1990.– Vol. 57, N6.– P. 919–924.

Arnaud F.G., Pegg D.E. Cryopreservation of human platelets

with propane-1,2-diol // Cryobiology.– 1990.– Vol. 27, N2. –

P. 130–136.

Balint B., Paunovic D., Vucetic D. еt al. Controlled-rate versus

uncontrolled-rate freezing as predictors for platelet cryopre-

servation efficacy // Transfusion.– 2006.– Vol. 46, N2.–

P. 230–235.

Balint B., Vucetic D., Trajkovic-Lakic Z. et al. Quantitative,

functional, morphological and ultrastructural recovery of

platelets as predictor for cryopreservation // Haematologia

(Budap).– 2002.– Vol.32, N4.– P. 363–375.

Balint B., Vucetic D., Vojvodic D. et al. Cell recovery, cryother-

mal micro-damages and surface antigen expression as

predictors for cold-induced GPIbα/CD42b-cluster mediated

platelet clearance after controlled-rate vs. uncontrolled-rate

cryopreservation // Blood Banking Transfus. Med.– 2004.–

Vol. 2, N1.– P. 22–26.

Born G.V.R., Cross M.J. The aggregation of blood platelets //

J. Physiol.– 1963.– Vol. 168, N1.– P. 178–195.

Borzini P., Lazzaro A., Mazzucco L. et al. Platelet cryopreser-

vation using second-messenger effectors and low-dose

(2%) dimethyl sulfoxide. In vitro evaluation of post-thawing

platelet activity with the platelet function analyzer// Haema-

tologica.– 2000.– Vol. 85, N8.– P. 885–887.

Gao D.Y., Neff K., Xiao H.Y. et al. Development of optimal

techniques for cryopreservation of human platelets. I. Platelet

activation during cold storage (at 22 and 8 degrees C) and

cryopreservation // Cryobiology.– 1999.– Vol. 38, N3.– P. 225–

235.

Currie L.M., Livesey S.A., Harper J.R. et al. Cryopreservation

of single-donor platelets with a reduced dimethyl sulfoxide

concentration by the addition of second-messenger effec-

tors: enhanced retention of in vitro functional activity// Trans-

fusion.– 1998.– Vol. 38, N2.– P. 160–167.

Schiffer C.A., Anderson K. C., Bennett C. L. et al. Platelet

Transfusion for Patients With Cancer: Clinical Practice Guide-

lines of the American Society of Clinical Oncology // Journal

of Clinical Oncology.–2001. Vol.19, N5.– Р. 1519–1538.

Xiao H., Harvey K., Labarrere C.A. et al. Platelet cryopreser-

vation using a combination of epinephrine and dimethyl

sulfoxide as cryoprotectants // Cryobiology.– 2000.– Vol. 41,

N2.– P. 97–105.

Accepted in 16.11.2010

10.

11.

12.

13.

14.

15.

16.

17.

18.

19.

20.

21.

22.

23.

452

3β-гидроксистероиддегидрогеназа 379

Saccharomyces cеrevisiae 59

агрегация тромбоцитов 443

адгезивные клетки костного мозга 145

адренокортикоциты 282

адипогенная дифференцировка 436

активации энергия 153

активность

антиоксидантная 288

нуклеирующая 18, 123, 225

альгинатные микросферы 235

амиды 109

амфибии 354

амфифильные соединения 388

антиглаукомные препараты 7

антиоксидантная активность 288

антиоксиданты 297

антиоксидантные ферменты 255

бактерии 18, 123

психрофильные 225

белки

белки-нуклеаторы 18, 123, 225, 354

гены 123, 225

бенциклана фумарат 255

быка сперма 246, 396

вируснейтрализующее действие 99

вирусом гриппа инфицирование 159, 318

воды молекул диэлектрической релаксации

частота 73

волюмометрия 153

воспаление 327

воспроизводимость результатов

криоконсервирования 246, 396

вязкость криопротекторов

динамическая 266

кинематическая 266

гемолиз

гипотонический 7

осмотический 47

гемолитические поры 7

гены белков-нуклеаторов 123

гепатоциты 407

гидратация 73

гидроксистероиддегидрогеназа, 3

- 379

гипертонический стресс 388

гипометаболическое состояние искусственное 25

гипотермическое хранение

кордовой крови человека 303

печени 255

гипотонический гемолиз 7

гормоны стероидные 282

гриппа вирусом инфицирование 159, 318

дегидратация 282

действие вируснейтрализующее 99, 318

диметилсульфоксид 407

динамическая вязкость криопротекторов 266

диолы 109

дифференцировка 135, 309

адипогенная 436

остеогенная 436

диэлектрической релаксации молекул воды

частота 73

дыхательные параметры 255

жизнеспособность 135, 309

замерзание, устойчивость к 354

замораживание

З.-оттаивание 288

режимы 443

фолликулярной жидкости 73

зонд флуоресцентный 34

иммунокомпетентные органы 99

иммунореактивность миелотрансплантата 145

иммунофенотип 135, 436

инкапсуляция 235

инфицирование вирусом гриппа 159, 318

искусственное гипометаболическое состояние 25

ишемия мозга 338

канал плоский 88

кинематическая вязкость криопротекторов 416

клетки

интерстиция тестисов 153

размеры 83

костного мозга адгезивные 145

крови ядросодержащие 66

мезенхимальные стромальные 135, 235, 436

Указатель ключевых слов номеров журнала

“Проблемы криобиологии” за 2010 год (том 20)

problems

of cryobiology

Vol. 20, 2010, №4

проблемы

криобиологии

Т. 20, 2010, №4

453

клетки

надпочечников, суспензия 379

стволовые кроветворные и

некроветворные 303

фетальные нервные 338

клеточная суспензия 88

клеточный потенциал трансмембранный 407

кристаллизация 18

плато 443

колониеобразующая способность 59

комбинированные криоконсерванты 47

контейнер 59

концентрат тромбоцитов 443

кордовая кровь 99

человека 66, 303

костный мозг 436

адгезивные клетки 145

коэффициенты проницаемости 153

криозащитные среды 109

комбинированные 47, 443

криоконсерванты комбинированные 47, 443

криоконсервирование 246, 396

воспроизводимость результатов 246, 396

клеток

кордовой крови 66, 303

костного мозга адгезивных 145

мезенхимальных стромальных 135,

235, 436

надпочечников 379

хориона культуры 309

сопоставимость результатов 396

спермы

быка 246

карпа 246

птиц 109

тромбоцитов 443

эффективность 246, 396

криоконсервированные фетальные

нервные клетки 338

криопротектор(ы) 34, 109, 153, 266, 443, 416

динамическая вязкость 266

кинематическая вязкость 416

плотность 416

поверхностное натяжение 416

цитотоксичность 109

"Криоцелл-гемокорд" препарата противовирусное

действие 159, 318

кристаллизация 18, 123

плато 443

кроветворные и некроветворные стволовые клетки

303

кровь кордовая 99

человека 66, 303

крыса 25, 363

культура клеток хориона 309

легкие 159, 318

лимфатические узлы 159

липидные капли 282

липиды 34

перекисное окисление 338

липосомы 34

математическая модель 246

медленноволновой сон 25

мезенхимальные стромальные клетки 135, 235, 436

мембрана эритроцита 88

меристема 297

миелотрансплантата иммунореактивность 145

микросферы альгинатные 235

митохондриальный потенциал трансмембранный 407

модуль сдвига 88

мозга ишемия 338

морфологическая (-ое)

исследование 159

мыши 159

эмбрионы 246, 318, 327

надпочечников клеток суспензия 379

насекомые 354

нервные клетки, фетальные 338

некроветворные и кроветворные стволовые клетки

303

нильский красный 282

нормотермическая реперфузия 255

нуклеаторы, белки 18, 123, 225, 354

нуклеирующая активность 18, 123, 225

окисление

липидов перекисное 338

пероксидазное 297

ооцит 318

органы иммунокомпетентные 99

осмотически неактивный объем, относительный 83

осмотический гемолиз 47

остеогенная дифференцировка 436

относительный осмотически неактивный объем 83

охлаждения

режимы 59

скорость 59, 443, 379

парадоксальный сон 25, 363

параметры дыхательные 255

перекисное окисление липидов 338

перекисные процессы 255

переохлаждение 443

problems

of cryobiology

Vol. 20, 2010, №4

проблемы

криобиологии

Т. 20, 2010, №4

454

пероксидазное окисление 297

петух 34

печени гипотермическое хранение 255

плато кристаллизации 443

плаценты человека экстракт 288, 327

плоский канал 88

плотность криопротекторов 416

поверхностное натяжение 416

поры гемолитические 7

потенциал трансмембранный

клеточный 407

митохондриальный 407

препарата "Криоцелл-гемокорд" противовирусное

действие 159, 318

пролиферация 309

проницаемости коэффициенты 153

противовирусное действие препарата "Криоцелл-

гемокорд" 159, 318

психрофильные бактерии 225

птиц сперма 109

размеры клеток интерстиция тестисов 83

реакции свободнорадикальные 297

регидратация 282

режимы замораживания 443

репарация гемолитических пор 7

реперфузия нормотермическая 255

рептилии 354

свободнорадикальные реакции 297

сдвига модуль 88

селезенка 159

скорость охлаждения 59, 443, 379

сон

медленноволновой 25, 363

парадоксальный 25, 363

сопоставимость результатов

криоконсервирования 396

спектрин 388

сперма

быка 246, 396

карпа 246

птиц 109

сперматозоиды петуха 34

среда

криозащитная 109

комбинированная 47

стероидные гормоны 282

стволовые кроветворные и некроветворные клетки

303

стромальные клетки, мезенхимальные 135, 235

стресс гипертонический 388

суперовуляция 318

терморегуляция 25, 363

тестисов интерстиция клетки 153

размеры 83

тимус 159

тихоходки 354

трансмембранный потенциал

клеточный 407

митохондриальный 407

тромбоцитов концентрат 443

тромбоциты 443

узлы лимфатические 159

уравнения эмпирические 266, 416

устойчивость к замерзанию 354

ферменты антиоксидантные 255

фетальные нервные клетки 338

флавопротеиды 297

флуоресцентный

зонд 34, 407

краситель 379

флуоресценция 297

фолликулярная жидкость 73

фумарат бенциклана 255

функциональные свойства [клеток кордовой крови] 66

хлорофилл 297

хориона клеток культура 309

хранение

гипотермическое

печени 255

кордовой крови человека 303

хромогранин А 379

цитотоксичность 109

частота диэлектрической релаксации молекул

воды 73

человека

кордовая кровь 66, 303

костный мозг 436

плаценты экстракт 288, 327

экстракт плаценты человека 288, 318

эмбрионы мыши 246, 318

эмпирические уравнения 266, 416

энергия активации 153

эритроцит(ы) 7, 47, 388

мембрана 88

эффективность криоконсервирования 246, 396

ядросодержащие клетки крови 66

problems

of cryobiology

Vol. 20, 2010, №4

проблемы

криобиологии

Т. 20, 2010, №4

455

3β-hydroxysteroid dehydrogenase 379

activation energy 153

activity

antioxidant 288

nucleating 18, 123, 225

virus-neutralizing 99

adipogenic differentiation 436

adhesive cells of bone marrow 145

adrenal cell suspension 379

adrenocorticocytes 282

aggregation of platelets 443

alginate microbeads 235

amides 109

amphibia 354

amphiphilic compounds 388

antioxidant(s) 297

activity 288

enzymes 255

anti-virus activity of the preparation "Cryocell-

Haemocord" 159, 318

artificial hypometabolic state 25

avian sperm 109

bacteria 18, 123

psychrophilic 225

bencyclane fumarate 255

blood nucleated cells 66

bone marrow 436

adhesive cells 145

bovine spermatozoa 246, 396

brain ischemia 338

carp spermatozoa 246

canal, flat 88

cell(s)

adrenal, suspension of 379

bone marrow adhesive 145

cryopreserved fetal neuronal C. 338

hemopoietic and non-hemopoietic stem C. 303

mesenchymal stromal 135, 235, 436

of chorion, culture 309

size, testes interstitium C. 83

suspension 88

testis intersticium 83, 153

cellular potential, transmembrane 407

chorion cells, culture of 309

chlorophyll 297

chromogranin A 379

clot retraction, platelet 443

coefficients of permeability 153

concentrate of platelets 443

colony-forming ability 59

comparability of cryopreservation results 246, 396

container 59

cooling

rates 59, 379, 443

regimens 59, 443

cord blood of human 66, 99, 303

"Cryocell-Haemocord", preparation, anti-virus activity

159, 318

cryopreservation

efficiency of 246, 396

of adrenal cell suspension 379

of avian sperm 109

of bone marrow adhesive cells 145

of chorion cell culture 309

of human cord blood 66, 303

of mesenchymal stromal cells 135, 235, 436

of platelets 443

results

comparability 396

reproducibility 246, 396

cryopreservatives, combined 47

cryopreserved fetal neuronal cells 338

cryoprotectant(s) 34, 47, 109, 153, 266, 416, 443

cytotoxicity 109

density 416

surface tension 416

viscosity 266, 416

cryoprotective media 109, 443

crystallization 18, 123

plateau 443

culture of chorion cells 309

cytotoxicity of cryoprotectants 109

dehydration 282

density of cryoprotectants 416

dielectric relaxation of water molecules, frequency of 73

differentiation

adipogenic 436

of chorion cells 309

of mesenchymal stromal cells 135

osteogenic 436

dimethyl sulfoxide 407

diols 109

dynamic viscosity 266

Key Word Index

“Problems of Cryobiology”, Volume 20 (2010)

problems

of cryobiology

Vol. 20, 2010, №4

проблемы

криобиологии

Т. 20, 2010, №4

456

efficiency of cryopreservation 246, 396

embryos, murine 246, 327

empirical equations 266, 416

encapsulation 235

energy of activation 153

enzymes, antioxidant 255

equation, empirical polynomial 266, 416

erythrocyte(s) 7, 47, 388

membrane 88

extract of human placenta 288, 327

fetal, cryopreserved neuronal cells 338

flat canal 88

follicular fluid 73

flavoproteins 297

fluorescence 297

fluorescent

dyes 379

probe 34, 407

fowl spermatozoa 34

free radical reactions 297

freeze-thawing 288

freeze-tolerance 354

freezing

of follicular fluid 73

regimens 443

frequency of dielectric relaxation of water molecules 73

fumarate, bencyclane 255

functional properties 66

genes of nucleating proteins 123, 225

hemolysis

hypotonic 7

osmotic 47

hemolytic pores 7

hemopoietic and non-hemopoietic stem cells 303

hepatocytes 407

hormones, steroid 282

human

bone marrow 436

cord blood 66, 303

placenta extract 288, 327

hydration 73

hydroxysteroid dehydrogenase, 3

- 379

hypertonic stress 388

hypometabolic state, artificial 25

hypotonic hemolysis 7

hypothermic storage

of human cord blood 303

of liver 255

hypotonic shock reaction 443

ice-nucleating proteins 18, 123, 225, 354

immunocompetent organs 99

immunophenotype of mesenchymal stromal cells 135,

436

immunoreactivity of myelotransplant 145

infection with influenza virus 99, 159, 318

inflammation 327

influenza virus infection 159, 318

insects 354

ischemia of brain 338

lipid(s) 34

droplets 282

peroxidation 338

liposomes 34

liver hypothermic storage 255

lungs 159, 318

lymph nodes 159

mathematical model 246

membrane of erythrocyte 88

meristems 297

mesenchymal stromal cells 135, 235, 436

mice 159, 318, 327

mitochondrial potential, transmembrane 407

morphological study 159, 318

murine embryos 246

myelotransplant immunoreactivity 145

Nile red 282

nucleated cells of blood 66

normothermic reperfusion 255

nucleating

activity 18, 123, 225

proteins 18, 123, 225, 354

genes 123, 225

neuronal, cryopreserved fetal cells 338

oocyte 327

osmotically inactive volume, relative 83

osmotic hemolysis 47

osteogenic differentiation 436

paradoxical sleep 25

permeability

coefficients 153

peroxidation 255, 297, 338

problems

of cryobiology

Vol. 20, 2010, №4

проблемы

криобиологии

Т. 20, 2010, №4

457

placenta extract, human 288, 327

platelet concentrate 443

pores, hemolytic 7

potential, transmembrane

cellular 407

mitochondrial 407

proliferation of chorion cells 309

protein(-s)

ice-nucleating 18, 123, 225, 354

genes 123, 225

psychrophilic bacteria 225

rate of cooling 59, 379, 443

rat 25, 363

regimens of cooling 59, 443

re-hydration 282

repair of hemolytic pores 7

reperfusion, normothermic 255

reproducibility of cryopreservation results 246, 396

reptiles 354

respiratory parameters 255

Saccharomyces cerevisiae 59

shear modulus 88

sleep

paradoxical 25, 363

slow wave 25, 363

slow wave sleep 25

spectrin 388

sperm(atozoa)

avian 109

bovine 246, 396

carp 246

fowl 34

spleen 159

stem hemopoietic and non-hemopoietic cells 303

steroid hormones 282

storage, hypothermic

of human cord blood 303

of liver 255

stress, hypertonic 388

structure reorganization

supercooling 443

superovulation 327

surface tension of cryoprotectants 416

tardigrades 354

thermoregulation 25, 363

testes interstitium cell(s) 153

size 83

thymus 159

transmembrane potential

cellular 407

mitochondrial 407

viability 135, 309

virus

V.-neutralizing activity 99, 159, 318

of influenza, infection 99, 159, 318

viscosity of cryoprotectants

dynamic 266

kinematic 416

volumetry 153

water molecules, frequency of dielectric relaxation of 73

problems

of cryobiology

Vol. 20, 2010, №4

проблемы

криобиологии

Т. 20, 2010, №4

458

Содержание журнала “Проблемы криобиологии” за 2010 год (том 20)

Содержание номера 1/2010

Журналу “Проблемы криобиологии” – 25 лет..............................................................................................................................

Теоретическая и экспериментальная криобиология

Руденко С.В., Саид М.К., Воловельская Е.Л. Влияние некоторых β-блокаторов на гипотонический гемолиз эритроцитов..

Гулевский А.К., Релина Л.И. Белки-нуклеаторы бактериального происхождения. Сообщение I. Общая характеристика

и классификация.....................................................................................................................................................................................

Шило А.В., Венцковская Е.А., Бабийчук Г.А. Изменения структуры сна у крыс после искусственного гипометаболичес-

кого состояния.........................................................................................................................................................................................

Линник Т.П., Дюбко Т.С., Мартынюк И.Н., Терещенко А.В. Взаимодействие криопротекторов с липосомами из

суммарных липидов спермиев петуха..................................................................................................................................................

Рамазанов В.В., Бондаренко В.А. Осмотические свойства эритроцитов, замороженных в средах с непроникающими

и проникающими криопротекторами..............................................................................................................................................

Сакун О.В. Механізми кріопошкодження дріжджових грибів Saccharomyces cerevisiaе при заморожуванні у водному

розчині диметилсульфоксиду з постійною швидкістю у контейнерах циліндричної форми....................................................

Гольцев А.Н., Волина В.В., Останков М.В., Гольцев К.А., Сокол Л.В., Бровко Е.В. , Чернышенко Л.Г., Кожина О.Ю.

Влияние криоконсервирования на функциональные свойства ядросодержащих клеток лейкоконцентрата кордовой

крови человека..................................................................................................................................................................................................

Геродес А.Г., Горобченко О.А., Нардид О.А., Николов О.Т. , Розанова Е.Д. Биохимические и диэлектрические характе-

ристики фолликулярной жидкости яичников человека после замораживания-отогрева.....................................................

Чернобай Н.А., Коваленко И.Ф., Божок Г.А., Коваленко С.Е., Пахомов А.В., Розанов Л.Ф. Осмотическое поведение

клеток интерстиция тестисов в гипертонических растворах NaCl и ПЭО-400....................................................................................

Гордиенко Е.А., Тодрин А.Ф., Осецкий А.И., Попивненко Л.И. Oпределение модуля сдвига мембран эритроцитов,

находящихся в суспензии.............................................................................................................................................................................

Криомедицина, клиническая и экспериментальная трансплантология

Онасенко Е.С., Бровко Е.В., Волина В.В., Пономарева В.Л. Инфицирование животных вирусом гриппа после

предварительного введения препарата “Криоцелл-гемокорд”. Сообщение I. Изучение функциональной активности

иммунокомпетентных органов мышей.....................................................................................................................................................

Правила для авторов.........................................................................................................................................................................

Содержание номера 2/2010

Теоретическая и экспериментальная криобиология

Линник Т.П., Мартынюк И.Н. Подходы к созданию криозащитных сред при криоконсервировании спермы птиц.....

Гулевский А.К., Релина Л.И. Белки-нуклеаторы бактериального происхождения. Сообщение II. Структура белков и

их гены.......................................................................................................................................................................................................

Труфанова Н.А., Петренко Ю.А., Петренко А.Ю. Влияние криоконсервирования на жизнеспособность, иммуно-

фенотип и дифференцировочные свойства мезенхимальных стромальных клеток ранних стадий органогенеза...........

Гольцев А.Н., Мацевитая И.Ю., Луценко Е.Д., Останков М.В., Дубрава Т.Г., Гольцев К.А., Ямпольская Е.Е. К вопросу

модификации иммунореактивности миелотрансплантата после криоконсервирования....................................................

Чернобай Н.А., Пахомов А.В., Коваленко И.Ф., Божок Г.А., Коваленко С.Е., Розанов Л.Ф. Зависимость проницаемости

мембран клеток интерстиция тестисов для молекул ряда криопротекторов от температуры..............................................

Криомедицина, клиническая и экспериментальная трансплантология

Волина В.В., Бровко Е.В., Онасенко Е.С., Пономарева В.Л. Инфицирование животных вирусом гриппа после пред-

варительного введения препарата “Криоцелл-гемокорд”. Сообщение II. Изучение морфофункционального сос-

тояния иммунокомпетентных органов мышей ..............................................................................................................................

106

109

123

135

145

153

159

problems

of cryobiology

Vol. 20, 2010, №4

проблемы

криобиологии

Т. 20, 2010, №4