Шевцов А.А. Ветеринарная паразитология

Подождите немного. Документ загружается.

Су-ауру необходимо дифференцировать от случной болезни, которая регистрируется в

виде спорадических

случаев во всех широтах: возбудитель болезни обнаруживается в соскобах со слизистой

оболочки полов; х органов, лабораторные животные не заражаются.

Лечение. Лошадям применяют наганин внутривенно (0,01—0,015/кг' в 10%-ном растворе).

Верблюдам технический наганин можно вводить внутривенно в повышенной дозе (0,06—

0,07 на 1 кг веса). Эффективными средствами также являются фурациллин в дозе 0,1—

0,15 на 1 кг веса животного в форме водной суспензии внутрь и антрацид — 0,01 на 1 кг

веса животного в водной суспензии подкожно.

Профилактика. Необходимо уничтожать кровососущих насекомых (стр. 326), изолировать

трипанозомо-носителей от слепней в неблагополучных хозяйствах, подвергать

химиопрофилактической обработке верблюдов и лошадей наганином, стерилизовать иглы

во время инъекций лечебных препаратов и прививок, утилизировать трупы животных,

павших от су-ауру. ,

Костиоз Рыб

Возбудитель костиоза рыб — биченосец Costia песа-trix из сем. Monatidae,

паразитирующий на коже и жабрах рыб.

Костиоз рыб чаще регистрируют в южных районах страны, где он причиняет

существенный ущерб рыбоводным хозяйствам.

Морфология возбудителя. Costia necatrix — средней величины биченосец (10—20 ц

длины), почковидной (с вентральной стороны) или клиновидной (с боку) формы.

Передний конец утолщенный, задний снабжен двумя жгутиками, при помощи которых

паразит прикрепляется к коже рыб. На вентральной стороне имеется желоб, на дне

которого расположено ротовое отверстие. В середине кости и находятся большое ядро и

вакуоли (рис. 78). При неблагоприятных условиях паразит способен образовать цисту до

10 ц в диаметре. Размножается костиа простым делением.

Эпизоотологические данные. Костиозом поражается молодь (до. двухмесячного возраста)

сазана, карпа, линя, карася, форели, густеры, лосося, а также аквариумных рыб. Годовики

не болеют, но являются носителями инвазии. Массовое размножение костий происходит

при температуре 25—28°. Большой устойчивостью обладают цисты костий. Они могут

находиться на коже и жабрах, а также и на дне водоема. Нередко инвазируют пруды

Рис. 78. Costia necatrix:

/ — вид с брюшной стороны; а — ядро; б — вакуоль;

в — жгутики; 2 — вид сбоку; 3 — циста; 4 — костиоз на

коже рыбы.

озерно-речные рыбы, в которых болезнь протекает более доброкачественно. У взрослых

рыб развивается естественный возрастной иммунитет.

Клинические признаки. Характерный симптом костиоза рыб — слизистый налет

голубоватого цвета, ясно за-метный'на коже рыб, находящихся в воде. При переходе

костий на жабры отмечается массовая гибель молоди рыбы. Длительность болезни около

одной недели.

Диагноз устанавливают на основании клинических признаков (голубой налет на коже) и

микроскопического исследования слизи с кожи и жабр больной рыбы.

Костиоз следует дифференцировать от гиродактилеза рыб, при котором поражаются не

только мальки, но и годовики карпа и сазана и резко отличается возбудитель.

Меры борьбы и профилактика. Поступающие в рыбхозы производители должны пройти

20-дневный каран-

тин, в конце которого микроскойируют слизь. В случае обнаружения костий

производителей пропускают три раза через ванны с 5%-ным раствором поваренной соли с

интервалом в 5—8 дней. Для уничтожения костий можно также применять аммиачные

ванны в концентрации 0,1 % три температуре 19—25° в течение 30 секунд. Установление

в прудах заградительных решеток задерживает проникновение в прудовое хозяйство

озерно-речной рыбы. Мальков пересаживают из нерестовиков в выростные пруды не

позднее 5—7 дней после выхода их из икры.

Через антипаразитарные ванны с 5%-ным раствором поваренной соли также пропускают

сеголеток перед посадкой их на зимовку и годовиков карпа до перевода в нагульные

пруды. Рассредоточенное содержание мальков, своевременная их подкормка

способствуют сохранению молоди рыбы.

В неблагополучных по костиозу рыбопитомниках следует также практиковать метод

летования прудов (вре-.менное осушение).

Лабораторно-практическое занятие 29

МИКРОСКОПИЧЕСКИЙ МЕТОД ДИАГНОСТИКИ ТРИХОМОНОЗА КРУПНОГО

РОГАТОГО СКОТА

Задание: 1) изучить морфологию трихомонады и схематично зарисовать ее;

2) освоить технику взятия материала для лабораторного исследования на трихомоноз от

коров и быков-производителей.

Оборудование и материалы. Ложка-катетер, скарификатор, ложки Фолькмана,

уретральные ложки, предметные и покровные стекла, бактериологические чашки,

микроскопы, пипетки, скальпели, ножницы, иглы, вата, спирт, физиологический раствор,

окрашенные препараты трихомонад и трипанозом, плакаты с рисунками жгутиковых,

коровы, быки и лабораторные животные (белые мыши).

Место занятия. Станция по борьбе с болезнями животных.

Методика проведения занятия. Преподаватель кратко объясняет строение жгутиковых,

обращая внимание учащихся на морфологические различия у трихомонад и трипанозом, а

также излагает методику взя-

тия материала для лабораторного исследования на трихомоноз. Вначале учащиеся

исследуют под микроскопом постоянные (окрашенные) препараты паразитических

простейших и схематично зарисовывают трихомонаду. . После выполнения первой части

задания учащиеся разделяются на звенья. Каждому звену преподаватель поручает

определенную работу по взятию материала для лабораторного исследования на

трихомоноз от коров и быков-производителей.

Каждое звено демонстрирует всей группе учащихся

технику выполнения задания.

В заключение учащиеся микроскопируют взятый материал с целью обнаружения живых

паразитических жгутиковых (трихомонад).

Контрольные вопросы

1. По каким морфологическим признакам жгутиковые отличаются от споровиков?

2. Какие характерные клинические признаки наблюдают у" больных трихомонозом коров?

3. На основании каких данных устанавливают диагноз на трихомоноз крупно- рогатого

скота?

4. Как заражаются животные су-ауру?

5. Как дифференцировать су-ауру от случной болезни?

6. Какие лечебно-профилактические мероприятия проводят при костиозе рыб?

Глава Xv Цилиатозы И Болезни, Вызываемые

Простейшими С Неясным Систематическим

Положением

Инфузории — обширная группа наиболее сложно организованных простейших,

относящихся к классу Ciliata.

Тело инфузорий постоянной формы, покрыто мерцательными ресничками. Внутри тела

находятся большое и малое ядро, сократительные вакуоли. У инфузорий также имеются

органеллы для принятия пищи (цитостом и цитофаринкс) и для выведения остатков пищи

(цитопиг).

Размножаются инфузории делением на две особи, которому часто предшествует

конъюгация (оплодотворение). При неблагоприятных условиях существования обладают

способностью образовывать цисты.

Большинство инфузорий ведет свободноживущий образ жизни, и только немногие виды

являются паразитами (возбудители ихтиофтириоза рыб, балантидиоза свиней и др.).

Ихтиофтириоз Рыб

Возбудитель ихтиофтириоза — инфузория Ihthyophthi-rius из отряда Holodrichida,

локализующаяся под эпителием кожи, жабр и роговицы рыб.

В последние годы энзоотические вспышки этой болезни зарегистрированы во многих

хозяйствах Белоруссии, РСФСР и Украины.

Морфология возбудителя. Ихтиофтиров относят к очень крупным паразитическим

простейшим (от 0,5 до 0,9 мм длины). Тело паразита округлой формы, покрыто

многочисленными мелкими ресничками. Большое ядро подковообразной формы.

Цитостом находится в передней части тела.

Биология паразита. Ихтиофтиры размножаются во внешней среде. При разрушении

бугорков на теле рыб инфузории попадают на дно водоема, где прикрепляются к

предметам и растениям и инцистируются (покрываются оболочкой). Внутри цисты ядро

многократно делится, образуя до 250 молодых (дочерних) паразитов, которые выходят в

воду и заражают рыбу. При температуре 16— 22° ихтиофтиры развиваются в течение 7—

8 суток (1—= 2 суток во внешней среде и 5—6 суток в рыбе).

Эпизоотологические данные. Поражаются ихтиофти-риозом многие виды прудовых рыб

(карп, карась, сазан и др.), чаще в молодом возрасте. Болезнь распространяется в других

хозяйствах при перевозке зараженных рыб, а также течением воды в нижерасположенные

пруды. Ихтиофтиры не размножаются при температуре'воды выше 27° и ниже 2°.

Массовое заболевание рыб ихтиофтирио-30м отмечается летом, особенно при скученной

посадке.

Клинические признаки. Кожа, жабры и роговица глаз рыб усеяны белыми бугорками,

жабры темно-вишневого цвета, кожа местами некротизирована, роговица воспалена.

Нередко рыба слецнет.

Диагноз ставят на основании клинических признаков и при микроскопии слизи с кожи и

жабр больных рыб.

Меры борьбы и профилактика. Для предупреждения заноса в благополучные рыбоводные

хозяйства ихтиоф-тириозной инвазии необходимо соблюдать общие профилактические

мероприятия.

В неблагополучных хозяйствах выполняют карантинные меры, изолированно

выращивают прудовых рыб разного возраста, производителей удаляют из нерестовиков

через сутки после окончания нереста, усиленно кормят

мальков.

Пруды, в которых наблюдалось заболевание рыбы их-тиофтириозом, освобождают от

воды и осушают в течение десяти дней, а мокрые участки дезинвазируют негашеной

известью (25 ц на 1 га).

БАЛАНТИДИОЗ СВИНЕЙ

Балантидиоз свиней вызывается двумя видами инфузорий: Balantidium suis и Balantidium

coli из сем. Burcha-

ridae.

Излюбленное место локализации балантидий — толстый кишечник. Свиньи поражаются

этой протозойной болезнью повсеместно. Balantidium coli, кроме свиней, паразитирует у

человека.

Морфология возбудителей. Балантидни встречаются в вегетативной и инцистированной

формах. Вегетативная форма имеет овальное, некрытое ресничками тело, которое

достигает 0,05—0,12 мм длины и 0,05 мм ширины. В передней части тела расположены

цитостом, ци-тофаринкс, в середине — большое ядро бобовидной формы, сократительная

вакуоль, а сзади — цитопиг.

Инцистированная балантидия круглой формы, покрыта двукон-турной оболочкой.

Размножаются балантидий простым делением.

Эпизоотологические данные. Балантидиозом чаще болеют поросята и подсвинки весной.

Взрослые свиньи являются носителями и распространителями инвазии. Свиньи

заражаются балантидиозом алиментарно (с кормом и водой). С фекалиями свиней

балантидий в форме цист выделяются во внешнюю среду, где при темШратуре 6— 28°

они сохраняют жизнеспособность в течение трех месяцев; они также устойчивы к

химическим дезинфекционным средствам, но быстро погибают под влиянием высокой

температуры и солнечного света.

Клинические признаки. Инкубационный период равен 1—2 неделям. У поросят 2—3-

месячного возраста балан-тидиоз клинически протекает в острой'и хронической формах,

часто с симптомами'колита, энтероколита (при острой форме) и гастроэнтероколита (при

хронической течении болезни). У больных свиней наблюдается длительный понос,

исхудание и общее угнетение, жидкие фе-

калии вонючие, с примесью слизи и крови. Больные поросята нередко гибнут.

Патологоморфологические изменения. Труп истощен, В толстом кишечнике находят

многочисленные кровоизлияния, язвы, фекалии с примесью крови, а также

многочисленных балантидий.

Диагноз. Цисты балантидий легко обнаруживаются при исследовании фекалий свиней

методом последовательных сливов, а вегетативные формы паразита — при микроскопии

мазков из только что выделившихся фекалий и соскобов слизистой толстых кишок

(посмертно).

Лечение. При балантидиозе свиней удовлетворительной эффективностью обладают ятрен

в дозе 0,05 на 1 кг веса животного, осарсол — 0,03 на 1 кг веса животного на прием два

раза в день в течение трех дней подряд, биомицин в 1%-ном растворе по 2—5 мл 3—5 раз

ежедневно, синтомицин в виде 10%-ного раствора по 5—6 мл два раза в день в течение 3

—5 дней.

Профилактика включает такие меры: соблюдение ве-теринарно-санитарных правил на

свинофермах, содержание свиней в теплый период года в лагерях переносного типа,

периодическое скармливание поросятам антибиотиков, дезинвазия свинарников горячим

2%-ным раство-_ром едкого натра.

Лабораторно-практическое занятие 30

МИКРОСКОПИЧЕСКИЙ МЕТОД ДИАГНОСТИКИ БАЛАНТИДИОЗА СВИНЕЙ

Задание: 1) исследовать пробы фекалий свиней -методами нативного мазка и

последовательных сливов;

2) изучить морфологию вегетативных и инцистирован-ных форм балантидий;

3) зарисовать две формы балантидий. Оборудование -и материалы. Микроскопы,

предметные и покровные стекла, стаканчики, стеклянные палочки, кюветы, глазные

пипетки, физиологический раствор поваренной соли, вода, плакаты, рисунки разных форм

балантидий и яиц гельминтов свиней, пробы фекалий от свиней, больных балантидиозом.

Место занятия. Лаборатория эпизоотологии и паразитологии.

Методика проведения занятия. Преподаватель кратко объясняет морфологию

вегетативной и ин-цистированной форм балантидий, акцентируя внимание-учащихся на

особенностях строения разных форм балантидий, на дифференциальных признаках

балантидий и: яиц гельминтов.

Затем учащиеся исследуют свежие фекалии поросят или подсвинков методами нативного

мазка с добавлением к кусочку фекалий физиологического раствора поваренной соли (для

обнаружений балантидий с ресничками) и методом последовательных сливов (для

выявления цист этого паразита).

Обнаруженных балантидий они рассматривают под малым и средним увеличением

микроскопа и схематично их зарисовывают. В конце занятия преподаватель проверяет

выполнение учащимися заданий.

ТОКСОПЛАЗМОЗ

Возбудитель токсоплазмоза Toxoplasma gondii относится к типу Protozoa, но его

положение в системе простейших пока остается неясным. Предложения одних ученых

выделить токсоплазму в самостоятельный класс, других — отнести ее к классу

жгутиковых не разделяются большинством ученых-паразитологов. Выделено несколько

штампов токсоплазм, сходных по морфологическим признакам и антигенным свойствам,

но различных по вирулентности.

Токсбплазмозом болеют человек, собаки, кошки, свиньи, крупный рогатый скот, овцы,

лошади, кролики, куры и дикие животные.

Морфология возбудителя. Токсоплазма имеет аркоподобную или полулунную форму.

Длина паразита 4—7 ц, ширина 2—4 ц. Ядро находится в центре токсоплазмы, занимая '/4

ее тела. Встречается паразит в свободном состоянии и в виде инцистированных форм

(псевдоцист) (рис. 79).

Биология токсоплазмы. Единственный способ размножения токсоплазм — деление на две

особи, происходящее только в клетках ретикулоэндотелиальной системы (печени,

селезенки и др.). Скопление паразитов внутри одной клетки образует псевдоцисты.

Эпизоотологические данные. Токсоплазмоз относится к ириродно-очаговым болезням.

Животные и человек за-

ражаются этой болезнью при поедании инвазированных токсоплазмами мяса и молока,

при вдыхании возбудителя вместе с пылью, проникновении его через поврежденную кожу

и конъюнктиву, передаче инвазии от матери плоду через плаценту, инокуляции паразита

кровососущими насекомыми. Значительна роль в распространении токсоплазмоза играют

мелкие грызуны и хищные животные. Из организма больного животного (или человека)

токсоплазмы выделяются вместе с молоком, выделениями из носовых отверстий и. глаз,

фекалиями и мочой.

К токсоплазмозу восприимчивы животные разных возрастов, однако тяжелее

переболевает молодняк,иногда со смертельным исходом. Человек нередко заражается

токсоплазмозом от домашних животных (собак и др.). Токсоплазмы во внешней среде

быстро погибают.

Клинические признаки. Различают острую, подострую « хроническую формы болезни, а

также токсопдазмоноси-тельство у животных.

Острая форма характеризуется лихорадкой, гепатитом, энцефалитом, конъюнктивитом,

пневмонией и нередко заканчивается смертельным исходом.

При подострой форме в сильной степени поражаются глаза (некроз сетчатки, атрофия

зрительного нерва) и центральная нервная система (судороги, гидроцефалия). При

хронической форме поражение центральной нервной системы и глаз менее выражено. У

части животных токсоплазмоз клинически не проявляется, а протекает в виде

носительства возбудителя инвазии.

У человека регистрируют две формы токсоплазмоза: врожденный (заражение плода в

утробе матери) и при-442

Рис. 79. Схема строения токсо-плазмы (электронная микроскопия) :

/ — коноид; 2 — фибриллы; S — аппарат Гольджи; 4 — токсонеми; 5— ядрышко; 6 —

ядро; 7 — мигохонд* рии.

обретенный (заражаются и болеют разные возрастные группы людей).

Диагноз. Токсоплазмоз диагностируют серологическим (РСК) и аллергическим (кожная

проба).методами. Подсобную диагностическую роль играют исследования дна глаза

(хориоретинит), спинномозговой жидкости (изменяется состав ликвора), крови

(эозинофилия и лейкопения). Для установления диагноза на токсоплазмоз посмертно

готовят мазки из плевральной и перитонеальной жидкостей и окрашивают их, а также

делают гистологические срезы из пораженных органов.

Лечение. Для лечения людей, больных -токсоплазмозом, рекомендуют хлоридин в

сочетании с сульфаниламидными препаратами.

Лечение и профилактика токсоплазмоза животных не

разработаны.

Бесноитиоз

Бесноитиоз — мало изученное протозойное заболевание крупного рогатого скота (реже

других сельскохозяйственных животных), возбудитель которого Besnoitia bes-noiti до

настоящего времени еще не отнесен к определенному классу (неясное систематическое

положение паразита).

На территории СССР впервые зарегистрировано это заболевание в 1959 г. Б. П.

Всеволодовым (Казахстан).

Видимо, оно и ранее регистрировалось не только в Казахстане как «злокачественная

экзема», «неизлечимая чесотка».

Цисты бесноитий локализуются в слизистой и серозной оболочках и в коже.

Люди не болеют бесноитиозом.

Эпизоотологические данные. Болезнь чаще регистрируется в поймах заросших водоемов

Казахской ССР, где в летний период обитает большое количество кровососущих

насекомых (гнус). Более восприимчив к бесноитио-зу крупный рогатый скот в 1'/2—2-

летнем возрасте независимо от пола и породы.

Клинические признаки. Инкубационный период при искусственном заражении скота

длится от 6 до 45 дней. Болезнь может протекать в острой и хронической формах. , При

острой форме наблюдается перемежающаяся лихорадка (повышенная на 0,5—1,5°

температура тела дер-

жится 3—6 дней), пониженный аппетит, учащенные пульс и дыхание, увеличение

поверхностных лимфоузлов (пред-лопаточных и других). Позднее отмечаются ринит,

подкожные отеки на конечностях, голове, подгрудке, а также мошонке (у самцов). Кроме

того, у.быков — орхитыг импотенция и утрата способности к воспроизводству; у самцов и

самок нередко поражаются глаза (диффузный склерит — на склере цисты с маковое

зерно).

Для хронической формы бесноитиоза характерны исхудание, сухой дерматит (чаще на

местах отеков), выпадение волос, поверхностные язвы. Возможны смертельные случаи

(иногда до 10%).

Патологоморфологические изменения. При вскрытии трупов крупного рогатого скота

обнаруживают такие па-тологоанатомические изменения: серые цисты (паразитарные

цисты) в подкожной клетчатке, на слизистой оболочке носовой полости, склере,

утолщение кожи в 3—5 раз и лимфоузлов.

Диагноз. При жизни животного боле'знь распознают на основании эпизоотологических

данных (заболевает крупный рогатый скот в полупустынной зоне, преимуще-' ственно в

поймах рек с зарослями камыша), клинической картины (дерматит, цисты на склере) и

лабораторных исследовании, а посмертно — при вскрытии трупов животных и выявлении

ци'ст в подкожной клетчатке.

Бесноитий можно обнаружить в цистах склеры и в-мазках крови (между эритроцитами)

после окраски препаратов по методу Романовского и микроскопии их при увеличении в

600—800 раз (паразиты полулунной формы с ядром).

Беснонтиоз необходимо дифференцировать от чесоткк (на основании обнаружения разных

по величине и форме возбудителей этих болезней).

Меры борьбы и профилактика. Лечение не разработано. В соответствии с методическими

указаниями по диагностике и мерам борьбы с бесноитиозом крупного рогатого скота

(1967 г.) следует проводить следующие профилактические мероприятия:

1) соблюдать карантинные меры;

2) своевременно выявлять больных животных и направлять их на убой;

ЗУ проводить дезинсекцию и дезинфекцию помещений и территорий лагерей и тырловок

скота 3%-ным раствором хлорофоса или сухой хлорной известью;

4) проводить мелиоративные и гидротехнические работы (улучшение прибрежной части

водоемов);

5) выпасать скот ночью;

6) проводить борьбу с гнусом (слепнями, комарами, мошками и мокрецами), возможно,

имеющими существенное значение в переносе инвазии;

7) мясо и другие пищевые продукты от больных животных направлять в техническую

утилизацию (переработка на кормовую муку).

Контрольные вопросы

1. По каким признакам различаются инфузории и жгутиковые?

2. В каких органах у животных обитают паразитические инфузории?

3. Как размножается возбудитель ихтиофтириоза рыб?

4. Какие клинические признаки и Патологоморфологические изменения наблюдаются при

балантидиозе свиней?

5. Как заражаются токсоплазмозом человек и животные?

Приложение

Рис. 80. Локализация стационарных паразитов у крупного рогатого скота:

/ — Thelazia rhodesi, Т. gulosa; Т. skrjabini; 3 — Coenurus cerebralls (larvae); 3 — Onchocerca

gutturosa; 4 — Fasciola hepatica, F. gigantica; 5 — Cy-sticercus tennicollis (larvae); 6 —

Paramphisfomum ichikowai; 7 — Moniezia exranansa; M. beneleni; S—thysaniezia giardl; 9—

Awitellina centripynstata; 10 — Strongyloides papillosus; // — Neoascarls vitulorum; 12 —

Hypoderma bovis, H. lineatum (larvae); 13 — Psoroptes equi var. bovis; 14 — Trichomo-nas

foetus; 15 — Eimeria smithi, E. zflrni; IS — Oesophagostomum radiatum; 17 — Toxoplasma

gondii; 18 — Onchocerca lienalis; 19 — Dicrocoelium lan-ceafum; 20 — Cysticercus bovis

(larvae); 21 — пироплазмиды; 22 — Echino-coccus granulosus (larvae); 23 — Dictyocaulus

viviparus; 24 — Demodex bovis; 25 — Haematopinus eurysternus; 26 — Chorioptes bovis.

Рис. 81. Локализация стационарных паразитов у овец: / — Acarus siro var. ovis; 2 —

Oestrus ovis (larvae); 3 — Coenu-rus cerebralis (larvae); 4 — Trichodectes ovis; 5 —

Muellerius capil-laris, Protostrongylus kochi; 6 — Fasciola hepatica F. gigantica; 7 — Moniezia

expansa, M. benedeni; 8 — Thysaniezia giardi; 9 — Avitellina centripunctata; 10 —

Paramphistomum ichikowai; 11— Psoroptes equi var. ovis; 12 — Melophagus ovinus; 13 —

Oesopha-gostomum columbianum; 14 — Chabertia ovina; 15 — Toxoplasma-gondii; 16 —

Trichostrongylidae; 17 — Dicrocoelium lanceatum; 18 — Cysticercus tenuicolis (larvae); 19 —

Dictyocaulus filaria; 20 — Echinococcus granulosus (larvae); 21 — Chorioptes ovis»

Рис. 82. Локализация стационарных паразитов у свиней: J — Acarus siro var. suis; 2 —

Metastrongylus elongatus, M. pudendotecfus, 'M. salmi; 3 — Trichinella spiralis (larvae); 4 —

Fasciola hepatica; 5 — Dicrocoeli-um lancealum; 6 — Strongyloides ransomi; 7 — Ascaris

suum; S — Trichocephalus suis; 9 — Oeophagostomum dentatum; 10 — Balantidium suis; 11

— Toxoplasma gondii; 12— Macracanthorhynchus hirudinaceus; 13 — Opisthorchis

felineus; .14 — Cysticercus tenuicolljs (larvae); 15 — Cysticercus cellulosae (larvce); IS —

Echinococcus granuolosus (Jarvae); 17 — Haematopinus suis.

Рис. 83. Локализация стационарных паразитов

у лошадей:

1 — Rhinoestrus purpurenus (larvae); 2 — Psoroptes equi var. equi; 3 — Onchocerca cervicalis;

4 — Parafilaria

multipapillosa; 5 —Fasciola hepatica; 6 — Dicrocoelium lanceatum; 7 —Асагиэ siro

var. equi; S — Anoplocephala magna; 9 — Parascaris equorum; 10 — Strongylidae; II —

Oxyuris equi; 12 — Gastrophilus 'haemorrhoidalis (larvae); 13 — Trypanoso-ma eqtiiperdum; it

— Gastophilus intestinalis (larvae); 15 — Drasche'4 megasto-:ma; 16 ~ Habronema muscae; H.

microstoma; /7—Piroplasma caballi; 18 — Nut-tallia equi; 19 — Haematopinus macrocephalus;

20 — Trichodectes pilosus; .21 — Chorioptes equi.

Рис. 84. Локализация стационарных паразитов у собак: / — Demodex canix; 2 — Trichinella

spiralis (larvae); 3 — Opislhorchis fe-lineus; 4 — Toxocara canis; 5 — Toxascaris leonina; 6 —

Ancylostoma ca-ninum; 7 — Uncinaria stenocephala; 8 — Echinococcus granulosus; 9 — Al-

veococcus multiloculatis; 10 — Multiceps multiceps; II — Toxoplasma gon-dii; 12 —

Dicrocoelium lanceatum; 13 — Piroplasma canis; 14 — Tricho-desfes canis.

Рис. 85. Локализация стационарных паразитов у кроликов:

/ — Psoroptes equi var. cuniculi; 2 — Fasciola hepatica; 3 — Cysticercus pisiformis; 4 —

Passalurus ambiquus; 5 — Eimeria magna, E. perforans; 6 — Dicrocoejium lanceatum; 7 —

Eimeria stiedae; 8 — Toxoplasma gondii; S — Notoedres cati.

Рис. 86. Локализация стационарных паразитов у кур: / — Menopon trigonocephalum; 2 —

Ascaridia galli; 3 — Raillieti-na tetragona, R. echinobothrida; '4 — Prosthogonimus cuneatus, P.

ovatus; 5 — Hypoderaeum co-noideum; 6 — Heterakis gallina-rum; 7 — Eimeria tenella; 8 —

Echinostoma revolutum; 9 —Cne-midocoptes mutans; 10 — Toxo-plasma gondii; // —

Davainea proglottina.

Рис. 87. Локализация стационарных паразитов у уток. / — Menoponidae; 2-Hysttichis

tricolor; 3 — Echinu-ria uncinata; 4 — Streptocara crassi-cauda; 5 — Porro-coecum crassum; S