добавляли бычий сывороточный альбумин 10 мг на 1 мл. Фракции разливали
в ампулы по 0,2 мл и лиофилизировали.
Рабочий титр иммунопероксидазного конъюгата чумного определяли
методом двойного антительного «сэндвича» по методике (Н.Ф. Василенко,
Л.И. Заревина, А.И. Мирошниченко, О.Н. Лопаткин, Г.И. Башкова, 1988). В
работе использовали полистироловые планшеты для иммунологических
реакций Московского
опытного экспериментального завода.
Планшеты сенсибилизировали иммуноглобулинами чумными,
полученными по ранее описанной методике, в концентрации 100 мкг/мл в
объеме 0,1 мл ФСБ рН 7,4, инкубировали 3 часа при температуре 37
0
С.
Несорбированные иммуноглобулины удаляли, в лунки вносили по 0,1 мл 1%
бычьего сывороточного альбумина, инкубировали 1 час при 37
0
С. После
удаления в лунки вносили по 0,1 мл чумного антигена, полученного по ранее
описанной методике, с концентрацией белка 0,1 мг/мл, инкубировали 1 час
при температуре 37
0
С. Несвязавшиеся антигены удаляли, планшеты
промывали 5-кратно по 3-4 мин 0,05% раствором твин-20 в ФСБ и
просушивали. Затем вносили по 0,1 мл разведенного пероксидазного
конъюгата от 1:100 до 1:800 и инкубировали 1 час при температуре 37
0
С.
После промывки добавляли по 0,1 мл свежеприготовленного субстрат-
индикаторного раствора (0,1 М лимонная кислота с 0,2 М раствором натрия
фосфорнокислого однозамещенного рН 5,0 в присутствии 0,006% перекиси
водорода и ортофенилендиамина в концентрации 0,4 мг/л) и инкубировали
10 мин при температуре (22±4)
0
С без доступа света. Для остановки реакции
использовали 0,2 М раствор серной кислоты.
Результаты реакции учитывали визуально и на анализаторе
колориметрическом иммуноферментном АКИ-Ц – 0,1 при длине волны 492
нм путем определения оптической плотности проб, находящихся в лунках
планшета. Рабочий титр иммунопероксидазных чумных конъюгатов составил
1:200 – 1:400.